パート 2: カルシウムシグナル伝達は、腎疾患における細胞死とオートファジーとのクロストークを仲介します
Mar 24, 2023
3. 腎障害におけるカルシウム媒介性赤血球崩壊
赤血球自殺死としても知られる赤血球アポトーシスは、細胞の収縮と赤血球表面のホスファチジルセリン (PS) への曝露によって特徴付けられます。 潜在細胞は貪食されるため、循環血液から急速に除去されます。 赤血球アポトーシスは、CKD 関連腎性貧血および末期腎疾患性貧血を引き起こす重要なイベントです。 真菌毒素であるオクラトキシン A は、Ca を介して貧血を引き起こす風土病性バルカン腎症の原因物質であることが知られています。2プラス細胞への侵入と細胞質の増加カルシウム2プラスレベル、細胞の自殺死または赤血球死につながります。 さらに、尿毒症毒素であるインドフェノール硫酸塩は、細胞外刺激によって赤血球の自殺死を誘導します。カルシウム2プラス末期の腎疾患における貧血の一因となる可能性がある内向きの流れ。 腎臓におけるバナジン酸 VO4 3 - 毒性もまた、細胞質を増加させることによって赤血球死を誘発したカルシウム2プラスこれは、慢性腎不全における貧血の発症に寄与した可能性があります。 マウスでは、ビタミンDが豊富な食事は、PS曝露と細胞収縮の刺激を大幅に変えることなく強化しましたカルシウム2プラス新たに抽出された赤血球中の濃度は、ビタミンD治療の効果が刺激に効果がない可能性があることを示唆しています.カルシウム2プラスエントリ。 これらの研究は、カルシウム2プラス細胞内への侵入または増加カルシウム2プラスレベルは、腎疾患につながる可能性がある赤血球のアポトーシスを促進する可能性があります。

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4.Ca2プラスシグナル伝達は腎疾患におけるオートファジーを調節する
マクロオートファジー/オートファジーは、真核生物において進化的に保存されたプロセスであり、細胞内物質のリサイクルにおいて重要な役割を果たしています。 オートファジーの間、損傷したオルガネラや有害なタンパク質の一部は、オートファゴソームによって二重層膜構造に包まれ、リソソームまたは小胞に送られて分解および再利用されます。 カルシウム2プラスは、細胞死を調節する重要なメッセンジャー分子であり、オートファジーの調節にも関与しています。
細胞内Caが存在することが証明されています。2プラスシグナル伝達は、腎尿細管細胞のオートファジーを媒介します。 in vivo 研究では、オートファジー経路の重要な調節因子である mTOR が AKI 後の尿細管修復に関与していることが示されています。 ADPKD1患者から生成された条件付きで不死化された近位尿細管上皮細胞(ciPTEC)では、CaSRの活性化により細胞内Caが増加しました2プラス解放し、mTOR 活動を減少させます。 Caの増加2プラス腎近位尿細管細胞からの内向きの流れは、mTOR 依存性のオートファジーを阻害し、それによって細胞をより死にやすくしました。 これは、細胞内 Ca によって調節される mTOR 依存性オートファジーを示唆しています。2プラスリリースまたは Ca2プラス内向きの流れは、腎疾患の発症を制御します。
古典的な一過性受容体電位チャネル 6 (TRPC6) は、主要な細胞内カルシウム2プラス腎臓の内向き流路であり、糖尿病性腎症、免疫介在性腎疾患、腎線維症、糸球体疾患、CKD などの腎疾患で重要な役割を果たしています。 腎近位尿細管細胞に関する in vitro 研究では、trpc6- を介した Ca2 と内向きの流れがオートファジーの細胞保護効果を阻害することが示されています。 同じ研究は、trpc6 ノックダウンがオートファジーの流れを促進し、AKI の主な原因である腎 I/R 中の尿細管細胞のアポトーシスを減衰させることを示しました。 一過性受容体電位非選択的陽イオンチャネル、サブファミリー M、メンバー 3 (TRPM3) は、媒介するもう 1 つの Ca2+ チャネルです。カルシウム2プラスオートファジーを調節する流れ。 表現の増加は、カルシウム2プラスCAMKK2 / AMPK / ULK1経路を介してオートファジーを流入させて刺激し、腎明細胞癌(ccRCC)の増殖を促進します。 これらの結果は、カルシウム2プラス細胞膜のチャネルが仲介しますカルシウム2プラス内向きの流れとオートファジーを阻害し、腎臓の損傷や疾患に関与する可能性があります。
さらに、細胞内カルシウム2プラス調節因子はオートファジーを媒介し、腎疾患において重要な役割を果たすことができます。 小胞体の重要な調節因子である間質相互作用分子1(STIM1)カルシウム2プラス、店舗運営を活性化カルシウム2プラス知覚された小胞体に反応した侵入(SOCE)カルシウム2プラス枯渇。 糖尿病性腎症のラットの血清培養有足細胞では、STIM1 のサイレンシングはオートファジーの減少を逆転させ、上皮間葉転換 (EMT) を回復させることで増加させたカルシウム2プラスホメオスタシス。 ADPKDを伴う有足細胞では、嚢胞腎はオートファジーに欠陥があり、EMTが強化されており、ERを減らして高レベルのSTIM1をサイレンシングすることで逆転させることができますカルシウム2プラスリリース。 ADPKD 患者の腎上皮細胞では、ポリシスチン 2 (PC2) をコードする変異体である BECN1 と PKD2 の間の相互作用が欠如しているため、オートファジーが阻害され、細胞内の増加を長引かせます。カルシウム2プラスレベル。 APOL1 バリアントは、カルシウム2プラスAPOL3 の神経細胞カルシウム センサー 1 (NCS-1) への依存性結合、および pi4- キナーゼ IIIb との相互作用による足細胞のオートファジーの干渉による。 これらの細胞内の役割カルシウム2プラス規制当局は、細胞内の複雑なネットワークがカルシウム2プラス調節されたオートファジーは腎疾患にも存在します。

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5. リソソームカルシウム2プラス腎臓病におけるシグナル伝達
リソソームカルシウム2プラスオートファジーに寄与し、リソソーム分解に重要です。 リソソーム分解は、リソソーム上のカルシウム活性化プロテアーゼ カルパイン (CAPN) によって媒介されます。 PKD1 の欠如は、CAPN プロテアーゼ依存的にリソソームの酸性化を損ない、PKD1 または PKD2 の不活性化変異は ADPKD につながります。 しかし、リソソームカルシウム2プラスストアはシスチノーシス ciPTEC 細胞株では影響を受けず、いくつかの細胞外アゴニスト誘導カルシウム2プラス応答は、疾患の病因に関与している可能性があります。 したがって、リソソームかどうかカルシウム2プラス腎疾患の発症に関与するシグナル伝達は、腎細胞の種類にも依存します。
さらに、細胞内の分布カルシウム2プラスER、ミトコンドリア、およびリソソームの間の変化は、リソソームの分解機能に影響を与える可能性があります。 ミトコンドリアは、ミトコンドリア関連膜 (MAM) を介して小胞体膜に接触します。MAM は、これら 2 つのオルガネラ間の通信を提供し、カルシウム2プラス小胞体からミトコンドリアに移ります。 さらに、ママを介した小胞体 - ミトコンドリアカルシウム2プラスクロストークは、アポトーシスとオートファジーを調節し、腎疾患の病因に関与しています。 ことが示された.カルシウム2プラス小胞体からミトコンドリアへの再分布は、初代ラット近位尿細管細胞のアポトーシスとオートファジーを調節し、鉛による腎毒性を促進しました。 とともにカルシウム2プラスリリースチャネル IP3R およびカルシウム2プラス再取り込みポンプ SERCA、小胞体は細胞質にカルシウム2プラス「ヒストン様」の方法でリソソームに。 リソソームの酸性環境は、主にリソソーム v-ATPase によって調節されており、カルシウム2プラス/H プラス交換ですが、そのような調節は哺乳動物細胞には見られませんでした。 肝細胞 HepG2 では、Cd が誘導するカルシウム2プラス小胞体プールから細胞質に放出され、それによってリソソームの酸性環境が破壊され、その分解につながります。 ただし、IP3R 阻害剤 2-APB と SERCA 活性化剤 CDN1163 による前処理により、cd 破壊されたリソソーム pH が回復しました。 これは、カルシウム2プラス小胞体、ミトコンドリア、およびリソソーム間の相互作用を媒介し、リソソーム機能を調節します。
ということも提案されている.カルシウム2プラスERからの流出はリソソームを調節しますカルシウム2プラスレベル。 小胞体カルシウム2プラスチャネル様タンパク質膜貫通BAX阻害モチーフ6(TMBIM6)は、小胞体ストレス応答とアポトーシスを媒介するだけでなく、カルシウム2プラスリソソーム一過性受容体電位ムチン 1 (TRPML1) チャネルを介して、飢餓マウスの腎臓でオートファジーの誘導を引き起こします。 さらに、リソソーム TRPML1 はミトコンドリアとリソソームの接触を調節し、カルシウム2プラスリソソームからミトコンドリアに移動し、ミトコンドリアの恒常性を調節します。 さらに、TRPML1-を介したリソソームカルシウム2プラスリリースは、転写レベルで TRPML1 発現を調節する転写因子 EB (TFEB) を調節し、他のオートファジーおよびリソソーム遺伝子の発現も調節します。 初代近位尿細管細胞では、Cd は TFEB 依存性のリソソーム分解を介してリソソーム機能障害を誘発し、Nrf2 の持続的な活性化を引き起こし、腎障害を引き起こします。 さらに、酸性セラミダーゼのαサブユニット、ライソゾームカルシウム2プラスTRPML1 チャネルを介した放出は有足細胞で阻害され、これは細胞増殖症および関連するネフローゼ症候群の発症に関連している可能性があります。 これらの結果は、リソソームがカルシウム2プラス細胞内で調節されているカルシウム2プラス貯蔵システムであり、腎疾患の進行に重要な役割を果たす可能性があります。

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カルシウム2プラスシグナル伝達は腎細胞死とオートファジーに関連しています
細胞死とオートファジーの関係は複雑で、矛盾することもありますが、細胞の運命にとって重要です。 興味深いことに、カルシウム2プラスシグナル伝達は、これら 2 つの細胞活動の間の架け橋として機能します。 カルシウム2プラス小胞体を介してIP3Rを放出することにより、細胞の増殖と生存を促進します。カルシウム2プラスその後、ミトコンドリアに運ばれ、ミトコンドリアの代謝が活性化されます。 ミトコンドリアの障害カルシウム2プラスホメオスタシスは、AMPK の活性化を介してミトコンドリアのオートファジー分解を引き起こします。 ミトコンドリアカルシウム2プラス過負荷は、活性酸素種 (ROS) の生成とシトクロム c の放出につながり、最終的にアポトーシスにつながります。 したがって、カルシウム2プラスシグナリングとカルシウム2プラス細胞内恒常性は、細胞の生存、アポトーシス、およびオートファジーの間のバランスを決定する可能性があります
1. 誘導されたオートファジーは細胞死を促進する
場合によっては、誘発されたオートファジーが細胞死を促進します。 腎線維症の片側尿管閉塞(UUO)マウスモデルでは、近位尿細管でオートファジーが持続しました。 オートファジーの薬理学的阻害とオートファジー関連タンパク質 7 (PT-ATG7 KO) の近位尿細管特異的ノックダウンは、これらのマウスの尿細管萎縮、アポトーシス、腎単位喪失、および間質マクロファージ浸潤を阻害しました。 これは、UUO中に腎近位尿細管で誘発された持続的なオートファジーが間質性線維症を促進することを示唆しています。 また、細胞外Ca2プラス抗菌ペプチドトリココニン VI によって引き起こされる内向きの流れは、肝細胞癌細胞のオートファジーとアポトーシスを誘発しました。 さらに、オートファジー関連遺伝子 (ATG5) の siRNA ノックダウンは、アポトーシスを減少させました。 これは、Cdが肝細胞のミトコンドリア起源のオートファジー細胞死を用量依存的に誘導することを示唆しています。 メラトニンは、cd 誘発オートファジー細胞死を阻害することにより、cd 曝露マウスの肝保護的です。 マウス脾臓およびヒトB細胞では、Cdは細胞内Caをアップレギュレートすることによりアポトーシスを促進しました2プラス誘導された液胞膜タンパク質1(VMP1)を介したオートファジー。 RAW264.7 マウス単球では、カドミウム誘発オートファジーと er 介在アポトーシス。 ただし、オートファジーの薬理学的および遺伝的阻害は、cd誘導アポトーシスを阻害しました。
さらに、Ca2プラスキレート剤は、細胞の生存率を完全に回復し、cd 誘導アポトーシスとオートファジーを阻害しました。 ブタ腎臓細胞LLC-PK1では、オートファジーメディエーターであるカルパインが細胞内Caを増加させることにより、アポトーシスの前に細胞壊死を誘導した2プラス高グルコース条件下でのレベル。 さらに、Ca2プラス最近、さまざまな腎疾患との関連性が示されているオートファジー依存性の細胞死である鉄死において重要な役割を果たします。 これらの研究は、細胞内 Ca2プラスシグナル伝達を介したオートファジーは、細胞死を促進し、腎疾患に関連している可能性があります。

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2. オートファジーの阻害は細胞死を促進する
場合によっては、誘導されたオートファジーが細胞死に対する保護効果を発揮します。 高グルコースは足細胞培養におけるオートファジーの流れを促進し、糖尿病マウスの足細胞において LC3BII 発現を誘導することが示された。 具体的には、有足細胞におけるATG5の欠失は、糸球体濾過バリアの漏出および糸球体硬化症を伴う糖尿病誘発性細胞増殖の加速をもたらした。 さらに、内皮特異的な ATG5 欠乏症は、毛細血管が薄くなり、糖尿病性腎症を加速させます。 したがって、内皮および足細胞のオートファジーは、相乗的に糖尿病誘発性糸球体硬化症から保護します。 マウス糸球体チラコイド細胞 (MES-13) では、IP3R を介した Cd 誘導 ER Ca2 プラス放出が、オートファジーとアポトーシスを誘導しました。 さらに、Cd は LC3B-II の発現を誘導しましたが、ラット チラコイド細胞でセケトソーム-1 (p62) の発現を減少させました。 オートファジーがノックダウンまたは RNA サイレンシングによって中断されると、細胞の生存率が低下し、プロカスパーゼ -3 切断の増加がアポトーシスの開始を示しました。 これらの結果は、誘発されたオートファジーが腎毒性から保護することを示唆しています。
ただし、最初のオートファジー保護はオートファジーの流れの中断に変換され、腎細胞の細胞死につながります。 つまり、オートファジーの阻害は細胞死につながります。 オートファジー阻害剤 3- メチルアデニンは cd 誘導性生殖細胞アポトーシスを悪化させますが、オートファジー誘導剤ラパマイシンはこの効果を弱めます。 さらに重要なことに、支持細胞における ATG5 の欠失は、cd トリガー生殖細胞アポトーシスを悪化させました。 これは、セルトリ細胞のオートファジーが、マウス精巣生殖細胞の cd 誘導アポトーシスを防止することを示唆しています。 オートファジーの活性化は、ヒト胎盤栄養外胚葉およびマウス胎盤における cd 誘発アポトーシスを阻害することも示されています。 重要な排泄器官である腎臓は、重金属などの毒素の蓄積の主な標的です。 以前の研究では、カドミウムがオートファジーの流れを長期的に阻害することにより、腎障害とアポトーシスを誘発することが示されています。 in vitro 研究では、オートファジーの流れの阻害がアポトーシスを悪化させる可能性があることも示されています。 Ca2プラスシグナル伝達経路は、これら 2 つの細胞活動を関連付ける可能性があります。 マウス腎尿細管細胞では、cd 阻害されたオートファジー流は上昇した Ca を誘導することによりアポトーシスを悪化させた2プラスレベル。 初代ラット近位尿細管細胞では、カドミウムと鉛(Pb)で抑制されたオートファジー分解がアポトーシス死を悪化させ、おそらく細胞内Caの再分布が原因でした2プラス小胞体、細胞質、ミトコンドリアの間。 CaSR の活性化は、細胞増殖を促進し、PLC-IP3-Ca と競合することにより、腎尿細管細胞の cd 誘導性アポトーシスから保護する可能性があります2プラスシグナリング。 Caの回復2プラスを介したオートファジー プロセスは、重金属による腎細胞毒性および腎障害から保護することができます。 細胞内Caの上昇によりオートファジーが阻害されることが示唆されています。2プラスレベルは、腎障害におけるアポトーシスの関与を悪化させる可能性があります
結論
要約すると、腎臓は in vivo での Ca2 とホメオスタシスの調節において重要な役割を果たします。 したがって、Ca2 プラス恒常性の崩壊は、一連の腎疾患を引き起こします。 腎細胞における Ca2 プラス シグナル伝達の調節は、細胞の運命を決定し、腎疾患と密接に関連しています。 小胞体、ミトコンドリア、およびリソソームを含む Ca2 プラス微細構造ドメインは、壊死、アポトーシス、および赤血球崩壊などの細胞死のさまざまなモードを調節し、これらの死のモードが中断されると、腎疾患の全体的な発症につながります。 . さらに、Ca2 とマイクロドメイン間の相互作用は、これらの形態の細胞死とオートファジーの間の相互作用を仲介します。 腎細胞運命の調節における Ca2+ 微細構造ドメインの役割に基づいて、これらの Ca2+ シグナルを標的とすることは、腎疾患を治療するための新しい戦略につながる可能性があります。
参考文献
1.ディアス、GF; グローブ、N.; Rogg、S。 Jörg、DJ。 Pecoits-Filho、R.; モレノ アマラル、AN; Kotanko、P.腎性貧血の病因におけるエリプトーシスの役割:基礎研究と数学的モデリングからの洞察。 正面。 細胞開発 生物。 2020 年 8 月 598148。
2.ジラニ、K。 ルペスク、A. ズビダ、M。 アベド、M.; シェイク、N.; Lang, F. マイコトキシン オクラトキシン A. Kidney Blood Press によって誘発される赤血球のアポトーシス死の増強。 解像度 2012, 36, 107–118.
3.アーメド、MS。 アベド、M.; フォルクル、J. ラング、F.尿毒症毒素インドキシル硫酸による自殺赤血球死の誘発。 BMCネフロール。 2013, 14, 244.
4.アーメド、MS。 ランガー、H。 アベド、M.; フォルクル、J. Lang, F. 尿毒症毒素であるアクロレインは、自殺による赤血球死を促進します。 腎臓血液プレス。 解像度 2013, 37, 158–167.
5. Föller、M.; ソプジャニ、M。 マフムード、H.; ラング、F.バナジン酸塩による自殺による赤血球死。 腎臓血液プレス。 解像度 2008, 31, 87–93.
6.ラング、E。 ジラニ、K. ビシンガー、R。 Rexhepaj、R。 Zelenak、C。 ルペスク、A. ラング、F。 Qadri, SM マウスのビタミン D が豊富な食事は赤血球の生存を調節します。 腎臓血液プレス。 解像度 2015, 40, 403–412.
7. Zhang、Y.; リー、K。 コング、A。 Zhou, Y.; チェン、D.; Gu、J。 Shi, H. オートファジーの調節不全は、一般的な環境汚染物質によって誘発される非アルコール性脂肪肝疾患 (NAFLD) の病原メカニズムとして機能します。 エコトキシコール。 環境。 サフ。 2021, 217, 112256.
8.ラ・ローヴェール、RM。 Roest、G.; Bultynck、G.; Parys, JB 細胞生存、アポトーシス、およびオートファジーの制御における細胞内 Ca(2 plus ) シグナル伝達および Ca(2 plus ) マイクロドメイン。 細胞カルシウム 2016, 60, 74–87.
9. リヴィングストン、MJ。 Dong、Z. 急性腎障害におけるオートファジー。 せみん。 ネフロール。 2014, 34, 17–26.
10.ディ・ミセ、A。 Tamma、G.; ラニエリ、M。 セントローネ、M。 van den Heuvel、L.; メカハリ、D.; レフチェンコ、EN; Valenti, G. カルシウム感知受容体の活性化は、細胞内カルシウムを増加させ、PKD1 欠損細胞の cAMP と mTOR を減少させます。 科学。 Rep. 2018, 8, 5704.
11. Hou, X.; シャオ、H.; チャン、Y.; Zeng、X。 黄、M。 チェン、X。 バーンバウマー、L.; Liao, Y. 一過性受容体電位チャネル 6 ノックダウンは、オートファジー活性化による酸化ストレス時の尿細管上皮細胞のアポトーシスを防ぎます。 細胞死ディス。 2018 年 9 月 1015 日。
12.ホール、G.; 王、L.; Spurney、タンパク尿性腎疾患における RF TRPC チャネル。 細胞 2019, 9, 44.
13. ホウ・エックス; 黄、M。 Zeng、X。 チャン、Y.; Sun、A。 ウー、Q。 朱、L.; 趙, H.; Liao、Y.腎虚血/再灌流および細胞性低酸素/再酸素化損傷におけるTRPC6の役割。 正面。 モル。 生物科学。 2021 年 8 月 698975。
14.ホール、DP; コスト、NG; Hegde、S。 ケルナー、E。 ミハイロワ、O。 ストラットン、Y. Ehmer、B。 ワシントン州アブプラナルプ; パンディ、R。 ビエシアダ、J. ら。 TRPM3 と miR-204 は、明細胞腎細胞癌における発癌性オートファジーを制御する調節回路を確立します。 癌細胞 2014, 26, 738–753.
15.ジン、J。 ウー、D.; 趙、L.; ゾウ、W.; シェン、W。 Tu、Q。 He, Q. 糖尿病性腎症における有足細胞上皮間葉移行に対するオートファジーおよび間質相互作用分子 1 の影響。 内外 J.クリン. 経験値 パトール。 2018, 11, 2450–2459.
16. Boletta、A. ポリシスチンと mTOR 経路との間のリンクの新たな証拠。 病理遺伝学 2009, 2, 6.
17.ソング、X。 ディ・ジョヴァンニ、V.; 彼、N.; 王、K.; イングラム、A。 ローゼンブラム、ノースダコタ; Pei, Y. 常染色体優性多発性嚢胞腎 (ADPKD) のシステム生物学: 遺伝子発現経路と統合された調節ネットワークのコンピューターによる同定。 ハム。 モル。 ジュネット。 2009, 18, 2328–2343.
18.ヤンダ、MK。 リュー、Q。 Cebotaru、V.; グギーノ、WB; Cebotaru、L.成人発症多発性嚢胞腎におけるカルシウムの役割。 細胞。 信号。 2019, 53, 140–150.
19. ペーニャ・オヤルズン、D.; Rodriguez-Peña、M。 Burgos-Bravo、F.; ベルガラ、A。 クレッチマー、C. Sotomayor-Flores、C.; カリフォルニア州ラミレス-サルミエント; De Smedt、H。 レイエス、M。 ペレス、W。 ら。 PKD2/ポリシスチン-2はBECN1と複合体を形成することでオートファジーを誘導します。 オートファジー 2021, 17, 1714–1728.
20. Pays, E. アポリポタンパク質 L (APOL) の機能: 腎臓病、神経伝達障害、癌、およびウイルス感染との関連性。 FEBS J. 2021, 288, 360–381.
21. 小野優子; サイード、TC。 反町宏治 創薬のためのカルパイン研究:課題と可能性。 ナット。 Rev.Drug Discov. 2016, 15, 854–876.
22. Peintner、L.; ベンカトラマン、A。 ウェールディン、A。 ホファー、A.; ブッシュ、T。 ボロノフ、A。 ビアウ、A. Kuehn、EW。 ケトゲン、M.; Borner, C. PKD1/ポリシスチン -1 の喪失は、CAPN (カルパイン) 依存的にリソソーム活性を損ないます。 オートファジー 2021, 17, 2384–2400.
23.イワノバ、EA。 マサチューセッツ州エルモネム。 Bongaerts、I.; ルイテン、T。 ミシアン、L.; van den Heuvel, LP; レフチェンコ、EN; Bultynck, G. シスチノーシス欠損ヒト近位尿細管上皮細胞における Ca(2 plus ) シグナル伝達。 細胞カルシウム 2016, 60, 282–287. [CrossRef] [PubMed]
24.ガオ、P。 ヤン、W。 Sun、L.ミトコンドリア関連小胞体膜(MAM)と腎臓病におけるそれらの将来の役割。 酸化剤 細胞。 ロンジェフ。 2020、2020、3120539。
25. Liu, G.; Wang、ZK。 Wang、ZY; ヤン、DB。 Liu、ZP。 Wang, L. ミトコンドリアの透過性遷移とその調節成分は、鉛に曝露されたラット近位尿細管細胞の初代培養のアポトーシスに関与しています。 アーチ。 有毒。 2016, 90, 1193–1209.
26.歌、XB; Liu、G.; リュー、F。 ヤン、ZG。 Wang、ZY; Liu、ZP。 Wang, L. オートファジー遮断とリソソーム膜透過処理は、初代ラット近位尿細管細胞における鉛誘発性腎毒性に寄与します。 細胞死ディス。 2017 年 8 月 e2863。
27. アタクパ、P.; ティライアパン、NB; マタラグカ、S.; プロール、DL; Taylor, CW IP(3) 受容体は優先的に ER-リソソーム接触部位と関連し、Ca(2 plus ) をリソソームに選択的に送達します。 Cell Rep. 2018, 25, 3180–3193.e7.
28. カリフォルニア州ロペス・サンフジョ。 サウスカロライナ州トービー。 プロール、DL; Taylor, CW リソソーム形状 Ins(1,4,5)P3- は、小胞体から放出された Ca2+ を選択的に隔離することにより、Ca2+ シグナルを誘発しました。 J.Cell Sci. 2013, 126, 289–300.
29.フォースター、C。 Kane, PM サイトゾル Ca2 プラス恒常性は、Saccharomyces cerevisiae における V-ATPase の構成的機能です。 J.Biol. 化学。 2000、275、38245–38253。
30. WK リー。 プロブスト、S。 Santoyo-Sánchez、国会議員。 Al-Hamdani, W.; ディーベルズ、I.; フォン・シヴァーズ、JK。 ケレク、E。 プレナー、EJ。 Thevenod, F. 腎 NRK-52E 細胞におけるカドミウム ストレスの発生中、初期のオートファジー保護は、リソソームの不安定性によるオートファジー流出の中断に切り替わります。 アーチ。 有毒。 2017, 91, 3225–3245.
31. . ワン、Y.; ジ、X。 ダイ、S。 リュー、H.; ヤン、D。 Zhou, Y.; Gu、J。 Shi, H. カドミウムは、ABCA1 をアップレギュレートし、OSBP をダウンレギュレートすることにより、コレステロールの再分布を誘発しました。 J.Inorg. 生化学。 2018, 189, 199–207.
32.コング、A。 チャン、Y.; ニン、B。 リー、K。 レン、Z。 ダイ、S。 チェン、D.; Zhou, Y.; Gu、J。 Shi, H. カドミウムは、小胞体 (ER) Ca(2 plus ) 恒常性によって調節されるリソソーム脱酸によって引き起こされるミクロソーム トリグリセリド転送タンパク質 (MTTP) 蓄積を介してトリグリセリド レベルを誘導します。 Chem.-Biol. 相互作用。 2021, 348, 109649.
33.キム、香港。 リー、GH; バッタライ、KR; リー、MS。 バック、SH; キム、HR; Chae, HJ TMBIM6 (6 を含む膜貫通 BAX 阻害剤モチーフ) は、リソソーム カルシウムの調節を介してオートファジーを強化します。 オートファジー 2021, 17, 761–778.
34.ペン、W。 ウォン、YC; Krainc, D. ミトコンドリアとリソソームの接触は、リソソーム TRPML1 を介してミトコンドリアの Ca(2 plus ) ダイナミクスを調節します。 議事録 国立 アカデミー。 科学。 米国 2020, 117, 19266–19275.
35.メディナ、DL。 ディ・パオラ、S.; Peluso、I.; アルマーニ、A。 De Stefani、D。 ベンディッティ、R。 モンテフスコ、S. Scotto-Rosato、A.; Prezioso、C。 フォレスター、A。 ら。 リソソーム カルシウム シグナル伝達は、カルシニューリンと TFEB を介してオートファジーを調節します。 ナット。 細胞生物。 2015, 17, 288–299.
36.サルディエロ、M。 パルミエリ、M。 ディ・ロンザ、A.; メディナ、DL; バレンザ、M。 バージニア州ジェンナリノ; ディ・マルタ、C.; ドノーディ、F.; エンブリオーネ、V。 ポーランド、RS。 ら。 リソソームの生合成と機能を制御する遺伝子ネットワーク。 サイエンス 2009, 325, 473–477.
37.王、LY; ファン、RF; ヤン、DB。 チャン、D.; Wang, L. Puerarin は、Nrf2 経路を阻害することにより、初代ラット近位尿細管細胞におけるカドミウム誘発性リソソーム機能障害を逆転させます。 生化学。 薬理学。 2019, 162, 132–141.
38. Zhao, Y.; Li、ZF。 チャン、D.; Wang、ZY; Wang, L. ケルセチンは、初代近位尿細管細胞における TFEB 依存性リソソーム修復を介して、カドミウム誘発オートファジー阻害を軽減します。 エコトキシコール。 環境。 サフ。 2021, 208, 111743.
39. ファン、RF; 唐、KK。 Wang、ZY; Wang, L. Nrf2 の永続的な活性化は、カドミウム誘発性腎障害における酸化ストレスとオートファジー阻害の悪循環を促進します。 毒物学 2021, 464, 152999.
40.李、G.; 黄、D.; バート、OM; ポクリス、JL。 チャン、A.; ゾウ ヨウ。 キッド、J。 ゲール、TWB。 Li, PL 足細胞特異的な Asah1 遺伝子欠失を有するマウスにおける異常な足細胞 TRPML1 チャネル活性およびエキソソーム放出。 バイオチム。 生物物理。 Acta Mol. 細胞生物。 脂質 2021、1866、158856。
41. スマイリ、SS。 ペレイラ、GJ。 コスタ、MM; Rocha、KK。 ロドリゲス、L.; カルモ、LGを行います。 平田 浩。 Hsu, YT アポトーシスとオートファジーにおけるカルシウム貯蔵の役割。 現在。 モル。 医学。 2013, 13, 252–265.
42.Shi、M。 チャン、T.; Sun、L.; ルオ、Y.; リウ、DH; シェ、ST。 ソング、XY; 王、GF; チェン、XL; 周、紀元前; ら。 カルパイン、Atg5、および Bak は、細胞外カルシウムの流入によって誘導されるアポトーシスとオートファジーの間のクロストークにおいて重要な役割を果たします。 アポトーシス Int. J.プログラム。 細胞死 2013, 18, 435–451.
43.マンマノ、F。 Bortolozzi, M. Ca(2 plus ) シグナル伝達、発達中の蝸牛におけるアポトーシスおよびオートファジー: 聴覚獲得へのマイルストーン。 細胞カルシウム 2018, 70, 117–126.
44.周、X。 ハオ、W。 Shi, H.; ほう よし; Xu, Q. カルシウム恒常性崩壊 - カドミウム誘導アポトーシス、オートファジー、および腫瘍形成をつなぐ架け橋。 オンコール。 解像度 扱う。 2015, 38, 311–315.
45.コシバ、AA。 ワン、Y.; チェン、D.; ウォン、CKC。 Gu、J。 Shi, H. 重金属誘発性腎毒性におけるカルシウム感知受容体 (CaSR) の役割。 生命科学 2020, 242, 117183.
46.デカイペール、JP。 モナコ、G.; Bultynck、G.; ミシアン、L.; De Smedt、H。 Parys, JB アポトーシスとオートファジーにおける IP(3) 受容体-ミトコンドリア接続。 バイオチム。 生物物理。 Acta 2011、1813、1003–1013。
47. Wacquier、B。 Combettes、L.; ヴァン・ニュー、GT; Dupont, G. 細胞内 Ca(2 plus ) 振動と Ca(2 plus ) 刺激によるミトコンドリア代謝との相互作用。 科学。 Rep. 2016, 6, 19316.
48.リビングストン、MJ。 ディン、HF。 ホアン、S.; ジャワ州ヒル; 陰、XM; Dong, Z. 腎尿細管細胞におけるオートファジーの永続的な活性化は、片側尿管閉塞時の腎間質線維症を促進します。 オートファジー 2016, 12, 976–998.
49. Pi, H.; 徐、S.; ライター、RJ。 郭、P。 チャン、L.; Li、Y。 リー、M。 Cao、Z。 Tian、L。 Xie、J。 ら。 カドミウム誘発性肝毒性におけるSIRT3-SOD2-mROS依存性オートファジーおよびメラトニンによるサルベージ。 オートファジー 2015, 11, 1037–1051.
50.区、J.; ワン、Y.; リュー、Y.; Shi, M.; 陰、L.; ほう よし; Zhou, Y.; ウォン、CKC。 チェン、D.; Guo、Z。 ら。 オートファジーの阻害は、カドミウム誘発性のマウス脾臓およびヒト B 細胞のアポトーシスを軽減します。 有毒。 科学。 2019, 170, 109–122.
51.それで、KY; リー、BH。 ああ、SH RAW264.7マウス単球における小胞体ストレス媒介カルパイン活性化によって調節されるカドミウム誘発免疫抑制におけるオートファジーの重要な役割。 毒物学 2018, 393, 15–25.
52.ハーウッド、SM。 アレン、DA; ラフテリー、MJ。 Yaqoob, MM 高グルコースは、LLC-PK1 細胞のアポトーシスの前に、カルパイン誘発性壊死を開始します。 腎臓内臓。 2007、71、655–663。
53.マハー、P。 van Leyen, K.; デイ、PN。 ホンラス、B。 ドルガ、A.; Methner, A. 酸化的グルタミン酸毒性とフェロトーシスによる細胞死における Ca(2 plus ) の役割。 細胞カルシウム 2018, 70, 47–55.
54.周、B。 Liu、J。 カン、R。 クリオンスキー、DJ。 クローマー、G. Tang, D. Ferroptosis は、オートファジー依存性の細胞死の一種です。 せみん。 癌生物。 2020, 66, 89–100.
55.キム、S。 カン、SW; ジュー、J。 ハン、SH; Shin, H.; ナム、BY; パーク、J。 ユー、TH; キム、G.; リー、P。 ら。 糖尿病条件下での腎尿細管細胞死におけるフェロトーシスの特徴付け。 細胞死ディス。 2021 年 12 月 160 日。
56. レノア、O.; Jasiek、M。 Henique、C。 Guyonnet、L.; ハートベン、B. ボーク、T。 チポン、A. Flosseau、K.; Bensaada、I.; シュミット、A。 ら。 内皮細胞とポドサイトのオートファジーは、相乗的に糖尿病誘発性糸球体硬化症から保護します。 オートファジー 2015, 11, 1130–1145.
57.王、SH。 シー、YL; コ、WC; 魏、YH; Shih, CM カドミウム誘発オートファジーとアポトーシスは、カルシウムシグナル伝達経路によって媒介されます。 細胞。 モル。 生命科学。 CMLS 2008、65、3640–3652。
58. Fujishiro, H.; リュー、Y.; アフマディ、B。 Templeton, DM ラット腎メサンギウム細胞におけるカドミウム誘発オートファジーの保護効果。 アーチ。 有毒。 2018, 92, 619–631.
59.周、GX; チュー、HL; シ、XT; ナン、Y.; リュー、WB; 大、LM。 シオン、YW。 イー、SJ; Cao、XL; 徐、DX; ら。 セルトリ細胞のオートファジーは、マウス精巣における環境カドミウム誘発性生殖細胞アポトーシスから保護します。 環境。 汚染。 2021, 270, 116241.
60.朱、HL; 徐、XF; シ、XT; Feng、YJ。 シオン、YW。 ナン、Y.; チャン、C.; Gao、L。 チェン、YH; 徐、DX; ら。 オートファジーの活性化は、ヒト胎盤栄養芽層およびマウス胎盤におけるカドミウム誘発アポトーシスを阻害します。 環境。 汚染。 2019, 254, 112991.
61.Shi、H。 Sun、X。 コング、A。 Ma, H.; Xie, Y.; チェン、D.; ウォン、CKC。 Zhou, Y.; Gu, J. カドミウムは、cAMP/PKA-COX2 依存メカニズムを介して PGE2 を増加させることにより、腎癌細胞の上皮間葉移行および遊走を誘導します。 エコトキシコール。 環境。 サフ。 2021, 207, 111480.
62.サン、X。 ワン、Y.; 江、T。 元、X。 レン、Z。 Tuffour、A。 リュー、H.; Zhou, Y.; Gu、J。 Shi, H. マウス腎臓のプロテオミクスによって明らかにされたカドミウムの腎毒性プロファイル。 生物。 要素をトレースします。 解像度 2021年、199年、1929年から1940年。
63.区、J.; レン、Z。 趙、J.; ペプラ、FA; Xie, Y.; チェン、D.; ワン、Y.; リュー、H.; Chu Wong、CK。 Zhou, Y.; ら。 カルシウム模倣化合物 NPS R-467 は、オートファジー プロセスを回復させることにより、慢性カドミウム誘発マウス腎障害から保護します。 エコトキシコール。 環境。 サフ。 2020, 189, 110052.
64.区、J.; ダイ、S。 リュー、Y.; リュー、H.; チャン、Y.; ジ、X。 ゆう、F。 Zhou, Y.; チェン、L.; ツェ、WKF; ら。 腎近位尿細管細胞におけるカドミウム誘発性細胞毒性を低減する保護経路としての Ca(2 plus ) 感知受容体の活性化。 科学。 Rep. 2018, 8, 1092.
65.チュー、BX; ファン、RF; リン、SQ; ヤン、DB。 Wang、ZY; Wang, L. 初代ラット近位尿細管細胞の鉛 (II) 誘発性細胞毒性におけるオートファジーとアポトーシスの相互作用。 J.Inorg. 生化学。 2018, 182, 184–193.
66.王、H。 Wang、ZK。 Jiao、P。 周、XP; ヤン、DB。 Wang、ZY; Wang, L. 鉛に暴露されたラット近位尿細管細胞の初代培養における細胞内カルシウムの再分布とそのアポトーシスへの影響。 毒物学 2015, 333, 137–146.
67.劉、F。 Li、ZF。 Wang、ZY; Wang, L.カドミウム曝露初代ラット近位尿細管細胞におけるアポトーシスとオートファジーの調節における細胞内カルシウム再分布の役割。 J.Inorg. 生化学。 2016, 164, 99–109.
68.劉、F。 王、XY; 周、XP; Liu、ZP。 歌、XB; Wang、ZY; Wang, L. カドミウムは、初代ラット近位尿細管細胞におけるサイトゾル Ca(2 plus ) 依存性オートファゴソーム-リソソーム融合を阻害することにより、オートファジー流出を妨害します。 毒物学 2017, 383, 13–23.
69.王、XY; ヤン、H。 王、MG。 ヤン、DB。 Wang、ZY; Wang, L. トレハロースは、アポトーシスを阻害し、オートファジー流出を回復することにより、初代ラット近位尿細管細胞におけるカドミウム誘発性細胞毒性から保護します。 細胞死ディス。 2017 年 8 月 e3099。






