Cistanche種の化学成分の分析
Mar 19, 2022
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Yong Jiang、Peng-Fei Tu、他
概要
の属の種Cistanche（中国語でRou Cong Rong）は多年生の寄生虫ハーブであり、主に乾燥地と暖かい砂漠に分布しています。 腎臓の欠乏、インポテンス、女性の不妊症、病的な白帯下、大量の不正出血、および老人性便秘の治療のための優れた強壮剤として、Cistancheハーブ「砂漠の高麗人参」の栄誉を獲得しました。 最近、抗酸化、神経保護、アンチエイジングなどの驚くべき生物活性のために、HerbaCistancheへの科学的注目が高まっています。 の化学成分Cistanche植物主に揮発性オイルと不揮発性オイルが含まれますフェニルエタノイド配糖体（PhGs）、イリドイド、リグナン、アルジトール、オリゴ糖、および多糖類。 薬理学的研究は、PhGが腎臓の欠乏、抗酸化、および神経保護を治療するための主要な有効成分であることを示しています。 ガラクチトールとオリゴ糖は老人性便秘の治療の代表であり、多糖は体の免疫力を改善する役割を果たします。 この論文では、の化学成分の進歩Cistanche植物そしてそれらの対応する分析が見直されます。
キーワード：Cistanche Herba、Cistanches Chemical、成分分析、フェニルエタノイド配糖体
1.はじめに
CistancheHoffmg。 世界22種のオロバンチャ科の属の1つであるEtLinkは、主に新疆ウイグル自治区、内モンゴル自治区、甘粛省青海省などの北半球の乾燥地帯と砂漠に分布しています。中国、イラン、インド、モンゴルなど[1]。 それらの成長環境は非常に厳しいです：極端な乾燥した気候、気温の厳しい変動、強い日光、年間降水量250 mm未満、そして荒廃した土壌[2,3]。 TheCistanche種は多年生の寄生虫ハーブに属し、Haloxylox ammodendron、H。persicum、Kalidium foliated、Tamarix植物などの砂固定植物の根に一般的に付着します[3]。 中国の高等植物の分類学的指標の記録[4]によると、中国には6つのCistanche種があります。 しかし、さらなる研究により、4つの種と1つのバリエーションのみが確認されましたCistanche中国に存在する、すなわちCistancheニクジュヨウYC Ma、C。tubulosa（Schenk）R. Wight、C。salsa（CA Mey。）G. Beck、C。salsavar。 albiflflora PF Tu etZCLouおよびC.sinensisG.Beck[5]。
Rou Cong Rong（ハーブCistanche）、神農の中国のマテリアメディカで最初に記録された、乾燥した多肉植物の茎を指しますCistanche植物。ハーブCistanche優れた強壮剤と見なされ、「砂漠の高麗人参」の栄誉を獲得しています。 Herba Cistancheの科学的価値は、腎臓の欠乏、インポテンス、女性の不妊症、病的な白帯下、大量の子宮出血、および老人性便秘の治療にあります[6,7]。 それは、歴代の王朝のために中国で最も頻繁に処方された腎臓欠乏症の薬でした。 ニクジュヨウ種の中で、C。deserticolaのみが中国薬局方（2000年版）[8]で再注文され、C。tubulosaは、類似の化学成分、薬理学的活性、およびその比較的C.deserticolaと比較した豊富な資源[9–11]。 しかし、近年、野生のニクジュヨウは乱獲により絶滅の危機に瀕しており、中国で保護が必要なクラスII植物の1つとして収集されています。 職員の天然資源の不足のためハーブCistanche、C。サルサやC.シネンシスなど、この属の他の種も多くの地域で代替品として使用されています[10]。
に関する科学的研究Cistanche植物1980年代に開始され[12]、化学分析により、エッセンシャルオイルを含むさまざまな化合物がフェニルエタノイド配糖体（PhGs）、イリドイド、リグナン、アルジトール、オリゴ糖、および多糖類は、Cistanche植物[13,14]。 薬理学的研究は、からの抽出物がCistanche植物は、腎臓の欠乏や老人性便秘の治療、学習と記憶の能力の向上、アルツハイマー病の治療、免疫力の強化、老化防止、倦怠感の軽減など、幅広い活動を行っています[14–21]。 生活水準の向上と高齢化社会の到来とともに、Cistanche植物それらの卓越した薬理学的活性のために、より多くの注目を集め、ますます広く使用されてきた。
の化学成分と薬理学的活性の研究に関するいくつかのレビューがありましたCistanche植物[13–15]。 本論文は、この属の化学分析と化学成分研究の進歩に焦点を当てています。
2.揮発性化合物
TCMの揮発性化合物に一般的に使用される抽出方法には、水蒸気蒸留と親油性有機溶媒抽出が含まれます。 水蒸気蒸留を使用して、C。salsaとC. tubeulosaの精油を抽出し、GC-MSによってそれぞれ38と21の成分を同定しました（表1）。 C. salsaのエッセンシャルオイルの主成分は、アルカン、アルコール、アルデヒド、およびいくつかの複素環式化合物で構成されていますが、パルミチン酸とリノール酸は、C。tubulosaの全オイルの2つの主成分です[22,23]。 C.deserticolaの揮発性化合物は石油エーテルによって抽出され、25の成分がGC-MSによって同定されました。 最も豊富な3つの成分は、メチルペンタデカノエート（13.61パーセント）、エチルパルミテート（12.39パーセント）、および2,5、6-トリメチロールエタン（7.60パーセント）です[24]。 C.deserticolaの揮発性成分に関する別の報告では、同時蒸留抽出法を使用した場合、オイゲノールが主成分であることが示されました[25]。 これら2つの論文[24,25]の異なる分析結果は、GC-MSの異なる抽出方法と異なる分析条件が原因である可能性があります。
これらに加えて、Maは、C。salsaから非極性成分を抽出するための超臨界流体抽出（SFE）法を報告しました。 GC-MSによる抽出物の分析では、アルカンの他に、酸素または窒素を含むいくつかのエステルおよび低分子化合物が存在することが示されました。 この結果は、極性修飾剤を添加することにより、SFEによってより多くの極性化合物を抽出できることを示しています[26]。
3.不揮発性化合物
の不揮発性化合物Cistanche植物主に、フェニルエタノイド、イリドイド、リグナン、アルジトール、オリゴ糖、および多糖類が含まれます。 これまでに、100を超える不揮発性化合物がCistancheプラント。 のさまざまな種類の化合物の分布Cistanche植物表2にリストされています。1995年、森谷[27,28]は、日本の医療市場からのHerba Cistanchesの供給源を調査したときに、C。salsaの植物材料が誤って識別されていたため、Cから分離された化学成分を報告しました。このレビューでは、80年代のサルサがC.deserticolaに再割り当てされました。
3.1。 フェニルエタノイド配糖体
3.1.1。 PhGの化学構造
PhGは、Cistanche種族。 現在までに、34のPhG(pヘニルタノイド配糖体）から分離されていますCistanche植物、22の二糖配糖体、10の三糖配糖体、および2つの単糖配糖体を含みます（表3）。 のPhGの構造を分析することによってCistanche、以下の構造的特徴が要約されています：二糖配糖体の糖部分は、Glc（3→1）Rha結合を持つグルコースとラムノースで構成されています。 グルコースは通常、アグリコンと直接結合し、クマロイルまたはカフェオイルが通常存在するC4またはC6の位置にあります。 PhGが三糖配糖体である場合、追加のグルコースまたはラムノースは通常、内部グルコースのC6位置に現れます。 それらのPhGの中で (pヘニルタノイド配糖体）からCistanche種、クレナトシド（34）は例外的なものであり、アグリコンの位置とその構造内の内部グルコースのC-2位置の間にエーテル環が存在するためです[34]。 最近、C.deserticolaから単離されたPhGであるサリドロシド（15）のX線単結晶構造が初めて報告されました[44]。
PhGの薬理活性研究(pヘニルタノイド配糖体）それらは、抗酸化、神経保護、免疫および性機能の強化、肝保護、抗放射線などのさまざまな機能を持っていることを示しています[15–17,40,48–50]。 その中で、神経保護はホットな話題になりつつあります。 いくつかの単一成分またはPhGの一部(pヘニルタノイド配糖体）さまざまな化学物質によって誘発される神経細胞のアポトーシスを阻害することが報告されており[51–57]、invitroでのそれらの神経保護はinvivoでのいくつかの動物モデルによっても証明されています[58–64]。 これらの結果は、PhGが(pヘニルタノイド配糖体）認知症やパーキンソン病などの神経変性疾患の治療に魅力的な候補となる可能性があります。
3.1.2。 PhGの分析
の主要なアクティブコンポーネントとしてCistanche植物、PhG(pヘニルタノイド配糖体）通常、生薬またはそれに対応する製剤の品質評価のマーカーとして使用されます。
3.1.2.1。 薄層クロマトグラフィー（TLC）によるPhGの分析。
張は最初に、アクテオシド（2）、エキナコシド（11）、およびシスタノシドA（3）のTLC同定法を確立しました。ハーブホンオニクシリカゲル、酢酸エチル-メタノール-9％酢酸（20：3：2）を展開溶媒として使用し、FeCl3溶液を着色試薬として使用します[65]。 この方法は、中国薬局方（2000）でもアクテオシド（2）の同定に使用されました[8]。 ただし、Chinese Pharmacopeia（2005）では、分離効果を大幅に高めるために薄層クロマトグラフィーの吸着剤をシリカゲルからポリアミドに変更し、メタノール-酢酸-水（2：1：7）を使用しています。現像溶媒として。 の2つの主要なPhGハーブホンオニク、エキナコシド（11）とアクテオシド（2）を同時に同定することができた[9]。
3.1.2.2。 紫外分光光度法（UV）によるPhGの分析。
前述のように、シンナモイル基はPhGの構造に存在することが多いため、PhGは、いくつかの着色試薬と反応させた後、UVまたは比色法によって直接測定できます[66-72]。 ただし、比色法は、不安定で再現性が低く、テストエラーが大きいため、TCMの化学成分を正確に測定するための合理的なアプローチではないことがわかっています。 さらに、UVによって検出されたサンプルを他の方法よりも前処理するのは面倒です。 したがって、現在、UV法は、純粋な化合物の定量には使用されていませんが、時折総PhGの測定にのみ使用されています。
3.1.2.3。 高速液体クロマトグラフィー（HPLC）によるPhGの分析。 すべての分析方法の中で、HPLCはPhGの定性および定量に最も頻繁に使用される方法であり、表4は、文献でHPLCによるPhGの分析で公開されている方法をまとめたものです。詳細は次のとおりです。
3.1.2.3.1。 生薬、生物学的サンプル、および複雑な製品中のPhGのHPLCによる分析。
1995年、XuはC.deserticolaの化学成分とその代替C.salsaの比較を行いました。 ＨＰＬＣ分析は、ＰｈＧの化学組成が(pヘニルタノイド配糖体）これらの2つの種の間で類似していたが、それらの量は異なっていた[73]。 同年、森谷は、7つのPhGをマーカーとして、ニクジュヨウ（Cd）、カンカニクジュヨウ（Ct）、カンカニクジュヨウ（Cs）の化学成分を比較しました。 結果は、シスタノシドA（3）、C（5）、および微量のツブロシドA（17）がCdおよびCsに存在するのに対し、ツブロシドA（17）のみがCtに存在し、シスタノシドA（3）およびCは存在しないことを示しました。 （5）。 また、CtおよびCs植物のPhGの総量は、Cd植物のそれよりも多いことがわかっています[28]。 この論文がCistanche多成分分析による属; ただし、これらの7つのPhGの定量化は残念です(pヘニルタノイド配糖体）体系的な方法論の検証なしで、1ポイントの外部標準メソッドによってのみ実行されました。
Tuは6つのPhGの定性分析を行いました(pヘニルタノイド配糖体）Rp-HPLCによるCistanche属の2つのPhGの定量分析。 結果は、C.deserticola、C.salsa、C.salsavar。の化学成分を示した。 albiflfloraとC.tubulosaは類似していたが、C。Sinensisのものは他のものとは異なっていた[10]。 Wangは、C。deserticola、C。tubulosa、およびC.salsaの7つのPhGをHPLC/ MS / MSで分析する方法を確立しました。その結果、7つの参照PhGの化学成分分布は種ごとに異なることが示されました。 74]。 グリコシド結合の断片化経路、エステル結合、およびPhGのいくつかの興味深い神経損失は、この論文[74]および別の論文[75]で議論されました。 ただし、PhG標準のフラグメンテーションメカニズムのみが研究されているため、HPLC-MS技術の利点はこれらの分析では完全には実証されていません。 これらのメカニズムを採用して未知のPhG化合物を解明し、より多くの化学的情報を提供し、他の骨格化合物のフラグメンテーションメカニズムの研究は無視されてきました。
定性分析に加えて、定量分析に関する多くの報告もありますハーブシスタnches、特に2つの主要なPhG(pヘニルタノイド配糖体）、エキナコシド（11）およびアクテオシド（2）。 2000年、Zhangは、HPLCによるアクテオシド（2）の含有量測定と、TLCによる5つの成分の定性的同定を含む、C.deserticolaの品質基準を確立しました[65]。 2003年には、さまざまな宿主植物や生息地で栽培されているHerba Cistanchesのエキナコシド（11）とアクテオシド（2）を検出するためのRp-HPLCメソッドが確立されました。 著者は、エキナコシド（11）とアクテオシド（2）の測定に2つの異なる移動相を使用しました。つまり、エキナコシドとメタノール-水-氷酢酸にはアセトニトリル-水-氷酢酸（13：86：1）を使用しました。 （32：67：1）アクテオシドの場合。 予備的な結果は、エキナコシドとアクテオシドの含有量が明らかに異なる宿主の影響を受け、栽培されたタマリクスL.で宿主化されたC.tubulosaのこれら2つの化合物の含有量が最も高かったことを示しました[76]。
2つの異なる溶媒を使用して同じ植物の2つの成分を決定するのは少し面倒であることを考慮して、エキナコシド（11）とアクテオシド（2）を同時に検出するためのより簡単なRp-HPLCメソッドが確立されました[77]。 その後、Chenはこの方法を採用して、野生および栽培されたC.tubulosaのエキナコシド（11）とアクテオシド（2）の含有量を測定しました[78]。 その結果、エキナコシド（11）の含有量はすべてのサンプルでアクテオシド（2）の含有量よりも著しく高く、野生のこれら2つの有効成分の含有量は栽培物の含有量よりも高かった[78]。 この論文のサンプル準備では、マルチバッチを混合する方法が採用されていることに言及する価値があります。これは、著者がハーブホンオニク.
野生以来Cistanche種は絶滅の危機に瀕しており、C.deserticolaとC.tubulosaの植栽は中国の新疆ウイグル自治区と内モンゴルで行われています。 培養の理論的ガイダンスを提供するために、さまざまな培養サンプルが分析されました。 CaoはPhGの内容を決定しました(pヘニルタノイド配糖体）春と秋にLC-MSを使用して、さまざまな季節に収集されたC.deserticolaのサンプルを比較します。 4つのPhG(pヘニルタノイド配糖体）すなわち、エキナコシド（11）、アクテオシド（2）、シスタノシドA（3）、および2 -アセチルアクテオシド（1）がマーカーとして選択され、それらの総含有量は秋よりも春の方が高いことが観察されました[79]。 。 Wangは、指紋とエキナコシド（11）の含有量を指標として、さまざまな成長時間と栽培されたC.tubulosaのさまざまな部分での化学成分の変化について研究しました。 彼は、PhGの化学的分布が(pヘニルタノイド配糖体）異なるサンプル間で類似していたが、各PhG、特にエキナコシド（11）の量は、さまざまなサンプル間で有意に異なっていた。 比較の結果、カンカニクジュヨウの栽培期間は3年以上であり、開花前に収穫時期を厳密に管理する必要があると結論付けました。 この論文では、栽培植物の品質は野生植物に勝るものはないことがわかったので、著者は、活性化合物の含有量を改善するために栽培技術を促進する必要があることを示唆しました[80]。 ヤンは華北平原でカンカニクジュヨウの乾物蓄積とエキナコシド（11）含有量を研究した。 その結果、カンカニクジュヨウの乾物蓄積は「S」字型であり、カンカニクジュヨウが5ヶ月間成長したときにエキナコシド（11）の含有量が最も高かった[81]。
これらの他に、分析されたサンプルの体系的かつ包括的な特性に焦点を当てた新しい技術である指紋も、Cistanche植物。 前述のように、Wangは、指紋やその他の指標を使用して、栽培されたC.tubulosaの化学成分とその変動を分析しました[80]。 Xieは、HPLCによってC.deserticolaのクロマトグラフィーフィンガープリントを確立し（図1）、それを使用して、さまざまな生息地からのサンプルの固有の品質の違いを評価しました。 最後に、異なる生息地からのサンプルの品質に顕著な違いが見られました[82]。 C.deserticolaの品質評価に関する研究でも同じ現象が観察されたため、後で、Cistanche種の品質の一貫性にさらに深刻な懸念を払う必要があります。
植え付けを除いて、細胞またはカルスによる栽培は、ハーブの資源不足を解決するための別の魅力的な代替手段ですCistanche。 培養プロセス中に、培養結果を分析し、培養条件を最適化するために、多くの分析方法が確立されてきました[83-88]。 対応する分析条件も表4にまとめられています。
複雑な生成物中のPhGの分析に関して、張は合計でイソアクテオシド（12）の定量法を報告しましたCistancheHPLCによるグリコシドカプセル[89]。 Shenqiyinaoカプセル中のアクテオシド（2）をHPLCで分析する方法を確立し[90]、レイはコングロングスピリット中のエキナコシド（11）をHPLCで測定しました[91]。 PhGの分析の要点(pヘニルタノイド配糖体）複雑な製品では、他の成分の乱れを避けるため、通常、サンプルの前処理とクロマトグラフィー条件の最適化が必要です。
3.1.2.3.2。 HPLCによるPhGの代謝分析。
2001年に、レイは最初にPhGの代謝プロセスを報告しました(pヘニルタノイド配糖体）ビーグル犬の胃腸では、エキナコシド（11）、アクテオシド（2）、イソアクテオシド（12）、および2 -アセチルアクテオシド（1）の4つの代謝物が、分取HPLCによって糞便から分離されました[96]。 2006年には、アクテオシド（2）とエキナコシド（11）の代謝がハーブホンオニクそれぞれ研究され、ラットにおけるそれらの薬物動態およびバイオアベイラビリティが分析された[97,98,134]。 自由に動くラットのバイオアベイラビリティと脳分布を調査するために、ラット血漿および組織ホモジネート中のアクテオシド（2）を検出するための、単純な固相抽出による高感度LC-MS/MSメソッドを確立しました[97,134]。 Jiaは、ラット血清中のエキナコシド（11）の含有量を測定するために、UV法との迅速かつ簡単なHPLCカップリングを開発しました[98]。 ただし、エキナコシドとアクテオシドのバイオアベイラビリティは、それぞれ{{1 0}} .83パーセントと0.12パーセントであることがわかりました。これは、PhGの重要な生物学的効果と矛盾していました。(pヘニルタノイド配糖体）動物で[58–64]。 今後、PhGの代謝過程と吸収メカニズムを解明するために、さらなる研究が必要です。(pヘニルタノイド配糖体）.
3.1.2.4。 PhGの分析(pヘニルタノイド配糖体）高速向流クロマトグラフィー（HSCCC）による。
サポートフリーの液液分配クロマトグラフィーであるHSCCCは、固定相へのサンプルの不可逆的な吸着を排除し、天然物の分取分離に広く使用されています。 従来の固液カラムクロマトグラフィーと比較して、より高い回収率と効率が得られます。 Leiは、酢酸エチル-n-ブタノール-エタノール-水（酢酸エチル-n-ブタノール-エタノール-水で構成される第4相二相溶媒システムを使用したC.サルサからのアクテオシド（2）および2-アセチルアクテオシド（1）の分離と精製にHSCCCを適用しました。 4：0。6：0。6：5、v / v）。 CCC画分のHPLC分析により、2つのPhGが(pヘニルタノイド配糖体）純度は98％を超えていました[99]。 その後、Liは2つの溶媒システムを使用する方法を確立しました。1つは酢酸エチル-エタノール-水（5：0。5：4.5、v / v / v）で、もう1つは酢酸エチル-n-ブタノールです。 –エタノール-水（{{1 0}}。5：0。5：0.1：1、v / v / v / v）でPhGを分離(pヘニルタノイド配糖体）C.deserticolaから。 5つのPhG(pヘニルタノイド配糖体）、エキナコシド（11）、シスタノシドA（3）、アクテオシド（2）、イソアクテオシド（12）、および2 -アセチルアクテオシド（1）が分離および精製され、これらの分離された化合物の純度はすべて92.5％を超えていました。 HPLC[100]によって決定されます。 これらのメソッドは、PhGの標準の将来の分離と精製のための優れたリファレンスを提供しました。
3.2。 ベンジル配糖体
最近、Leiは、C。salsaからの3つの新しいベンジルグリコシドであるサルササイドA–C（35–37、図2）の単離と構造解明を報告しました。これは、から単離されたベンジルグリコシドでもあります。Cistanche植物初めて[47]。 これらのベンジルグリコシドの構造的特徴は、アグリコンのベンジルアルコール置換フェネチロールを除いて、この属から単離されたフェニルエタノイドの構造的特徴と類似しています。
3.3。 イリドイド
これまでに、3つのイリドイドアグリコンと14のイリドイド配糖体がCistanche植物（38–54、表5）[102–109]。 からのイリドイド配糖体の構造的特徴Cistanche植物要約すると次のようになります。グルコースはアグリコンのC1位置で発生し、H5とH9で構成されます。 ヒドロキシル化はしばしばC8およびC10の位置で起こります。 場合によっては、C10のヒドロキシルとC1またはC3との間で脱水が起こり、エポキシ部分が得られることがあります。
3.4。 リグナン
1つのリグナンアグリコンと5つのリグナン配糖体がC.deserticolaとC.tubulosaの植物から分離されました（55–60、表6）。 これらの化合物の基本的な骨格は、テトラヒドロフランとベンゾフランのリグナンです。 いくつかのリグナンが分離されたそのC.tubulosaの供給源は主にパキスタンからのものですが、中国で収集されたC.tubulosaから分離されたリグナンはほとんどありません。 これはさらに、中国とパキスタンのカンカニクジュヨウの間に化学的差異が存在することを証明した[27,28]。
3.5。 炭水化物とその誘導体
3.5.1。 糖類とその誘導体の化学的研究
炭水化物は、Cistanche種の植物の乾燥質量の高い割合を占めています[110]。 その中で、単糖の1つであるガラクチトールは、HerbaCistanchesで下剤活性を持つ主要な活性成分として報告されています[18、19、103、104]。 一方、多糖類は、体の免疫力、老化防止、および抗癌作用を促進する有効成分と見なされてきました。ハーブホンオニク[20,21,111–113].
90年代に、多糖類に関する研究Cistanche種は、単糖の組成の分離/精製と分析に焦点を合わせていました[110,112,114–116]。 からの多糖類の正確な構造Cistanche種は1997年まで解明されていません。表7に、Cistanche種から分離された多糖類の解明された構造特性を示します。 興味深いことに、これらはすべてC.deserticolaから分離されており、他の多糖類はCistanche植物研究されていません。
これらを除いて、シスタノシドF、シスタノシドI、シスタンチューブロースA1 / A2、およびシスタンシネンソースA1/A2などのいくつかのオリゴ糖誘導体もハーブホンオニク（図3）、これは実際にはPhGの残基です(pヘニルタノイド配糖体）フェネチロールアグリコンを失った後。 自然界にはグルコースに存在する配置があるため、これらのオリゴ糖誘導体はアノマーとしても存在する場合があり、この現象は対のNMR信号から観察できます[37、39、40、11、45]。
3.5.2。 糖類とその誘導体の分析
の品質を評価するためにハーブ ホンオニク包括的に、Herba Cistanches [18,19,97,98]で下剤活性を持つ主要な有効成分であるガラクチトールが、品質を評価するための指標として最近選択されました。ハーブホンオニク、PhGと組み合わせる(pヘニルタノイド配糖体）。 さまざまな地域のカンカニクジュヨウの品質を包括的に評価するために、カイは、HPLCによってエキナコシド（11）およびアクテオシド（2）と結合したガラクチトールの定量方法を開発しました。 ELSDは、UVスペクトルでの末端吸収が弱いため、ガラクチトールの検出器として選択され、その分離にはPrevailCarbohydrateESポリマーゲルカラムが使用されました。 さまざまな生息地からのC.deserticolaとC.tubulosaのバッチが測定され、新鮮なC.tubulosa煎じ薬片の処理方法もこの方法によって最適化されました[92,93]。 彼らの結果は、記載された方法によるカンカニクジュヨウ煎じ薬片中のガラクチトール、エキナコシド（11）、およびアクテオシド（2）の含有量が、日射または従来の方法によって乾燥されたものより数倍高いことを示した[93]。 さらに、Zhangは、開発溶媒として酢酸エチル-ピリジン-水（7：2：1）を使用し、着色剤として1％KMnO4溶液を使用して、C.deserticola中のマンニトールのTLC同定法を確立しました[65]。
多糖類の含有量の決定についてCistanche種、フェノール-硫酸が最も頻繁に使用される方法であり、さまざまな抽出方法によるC. salsaの多糖類の含有量は、11.61パーセントから13.22パーセントであると決定されました[123-125]。 ただし、比色法の限界により、これらは予備的な分析結果にすぎません。
3.6。 アルカロイドとそれに対応する分析
これまで、2つのアルカロイドのみが分離されていますCistanche種、すなわちベタイン（65）およびN、N-ジメチルグリシンメチルエステル（66）（図3）[126]。 ベタイン（65）は植物に一般的に分布するアルカロイドであるため、その定性的および定量的分析に関する報告がさらにあります。 Zhangは、比色法と組み合わせたTLC識別を使用して、処理前後のC.deserticolaのベタインの含有量の変動を比較しました[127]。 このTLCメソッドはChinesePharmacopoeia2000 [8]でも収集されましたが、比色分析によるその定量メソッドは、後に他の人によって採用され、ハーブホンオニク[128,129]。 2007年、Gongは、ELSD検出器と組み合わせたCistanche植物のベタインを検出するためのHPLC法を報告しました。ベタインは、C。deserticolaにのみ存在し、C。tubulosaには存在しないことが判明しました。 したがって、著者は、これら2種類のCistanche植物を区別するためのマーカーとしてベタインを使用する必要があることを示唆しました[101]。 ただし、サンプルバッチは種ごとに2つしかなく、C。tubulosa（雲南省）の生息地の1つが不確実であることを考慮すると、この結論をさらに証明することをお勧めします。 さらに、Herba CistancheのベタインのTLC同定は、その非特異的特性のために、2005年以降中国薬局方から削除されました。 したがって、HerbaCistacheの抽出技術を最適化するための唯一の指標としてそれを採用することは合理的ではありませんでした[129]。
3.7。 その他の化合物
Cistanche植物には、フェノール配糖体、モノテルペノイド、ステロールまたはそれらの配糖体、脂肪酸、アミノ酸、およびいくつかの微量元素など、他の化合物が少量存在します[13,41,42,103,105,130–133]。
4.結論
このレビューでは、の化学成分Cistanche種とその分析方法が説明されています。 既存の分析の中で、大部分はPhGに集中しています(pヘニルタノイド配糖体）、およびHPLCは、その高い効率と精度により、最も広く使用されている方法です。 ホンオニク属の種に関する私たちの長年の研究と組み合わせた以前の研究の分析を通して、の分析に存在するいくつかの主要な問題Cistanche植物1つ目は、種源の混合使用法です。C.deserticolaとC.tubulosaは、中国の薬局方で収集された2つの公式種です。 ただし、他の2つのCistanche種、C。salsaとC. Sinensisも、資源不足のために一部の地域で使用されています。 異なる種間の比較に言及しているいくつかの出版物がありますが[6–8]、サンプルのバッチとマーカーが限られているため、十分に説得力がありません。 したがって、異なる供給源の生薬を比較分析するための指紋技術などの包括的な方法を確立する必要があります。 2つ目は、HerbaCistanchesの品質の不一致はあまり注目されていないということです。 Cistanche種は寄生虫のハーブです。 気候、生息地、宿主、収穫時期、処理方法、同じ植物のさまざまな部分など、品質に影響を与える多くの要因があります。 私たちの研究は、Cistanche種の品質、特に野生のC.deserticolaの品質が安定していないことを示しました[80,82,92]。 ただし、この問題は以前の分析の一部では無視されており、1つまたは2つのサンプルしか使用されていなかったため[74,76]、不正確な結論につながる可能性があります。 したがって、将来的には、より客観的な結論を得るために、はるかに多くのサンプルを収集して分析する必要があります。 3つ目は、現在の分析は主に2つの主要なPhGに集中していることです。(pヘニルタノイド配糖体）、エキナコシド（11）およびアクテオシド（2）ですが、ご存知のように、TCMの薬理作用は、多成分またはさまざまな種類の成分の協力です。 したがって、アクティブなマルチコンポーネントの同時決定は、TCMの品質管理にとってより意味があります。 ただし、これまで、3つ以上のPhGの定量分析はありませんでした。ハーブホンオニク、ベンジル配糖体、イリドイド、リグナンの分析に関する報告はありません。 次に、将来の研究は彼らの分析的および薬理学的研究を強化する必要があります。 全体として、Cistanche種の分析に関する現在の研究は、まだ低レベルの状態にあります。 Herba Cistanchesは重要な強壮剤ですが、実際には、2人の代表的なPhGだけがその品質を効果的に制御することはできませんでした。(pヘニルタノイド配糖体）[9]。 マルチコンポーネントの決定と指紋の組み合わせは、TCMの品質管理のための強力なアプローチと見なされてきました。 将来的には、これら2つの分野でのCistanche種の研究レベルをさらに改善する必要があります。 PhG、イリドイド、およびその他の有効成分の定性的および定量的分析を同時に行うことができる方法の確立ハーブホンオニク有意義な研究の方向性となるでしょう。
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謝辞
この作品は、中国国家自然科学基金（No. 30472070）と、中国教育省の新世紀人材プログラム（No. 985-2-102-113）によって財政的に支援されており、著者も感謝しています。専門家の技術支援をしてくれた北京大学のXiaomingLiu、Zhihong Song、LiLei。
差出人：'の化学成分の分析CistancheYong Jiang、Peng-FeiTuによる種
--- Journal of Chromatography A、1216（2009）1970–1979
