食事によるアンチエイジングポリフェノールと潜在的なメカニズム パート 3
Aug 01, 2023
参考資料（続き）
シスタンケのグリコシドは、心臓および肝臓組織の SOD 活性を高め、各組織のリポフスチンおよび MDA の含有量を大幅に減少させ、さまざまな活性酸素ラジカル (OH-、H2O2 など) を効果的に消去し、引き起こされる DNA 損傷から保護します。 OHラジカルによる。 Cistanche フェニルエタノイド配糖体は、フリーラジカルの強力な消去能力、ビタミン C よりも高い還元能力を持ち、精子懸濁液中の SOD の活性を向上させ、MDA の含有量を減らし、精子膜機能に一定の保護効果をもたらします。 Cistanche 多糖類は、D-ガラクトースによって引き起こされる実験的老化マウスの赤血球および肺組織における SOD および GSH-Px の活性を高めることができるほか、肺および血漿中の MDA およびコラーゲンの含有量を減少させ、エラスチンの含有量を増加させることができます。 DPPHに対する優れた除去効果、老化マウスの低酸素状態の延長、血清中のSODの活性の改善、実験用老化マウスの肺の生理的変性の遅延 細胞の形態学的変性を伴う実験により、Cistancheには優れた抗酸化能力があることが示されています皮膚の老化疾患を予防および治療する薬になる可能性があります。 同時に、Cistancheに含まれるエキナコシドは、DPPHフリーラジカルを捕捉する顕著な能力を有し、活性酸素種を捕捉してフリーラジカルによるコラーゲン分解を防ぐ能力があり、また、チミンフリーラジカルアニオン損傷に対する優れた修復効果もあります。
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27. ベイヤード、V. チャモロ、F. モッタ、J. ホレンバーグ、ノースカロライナ州 フラバノールの摂取は一酸化窒素依存性プロセスによる死亡率に影響しますか? パナマにおける虚血性心疾患、脳卒中、糖尿病、がん。 内部。 J.Med. 科学。 2007、4、53–58。 [相互参照] [PubMed]
28. ノースカロライナ州ホレンバーグ。 マルチネス、G. マッカロー、M. マインキング、T. パッサン、D. プレストン、M. リベラ、A. タプリン、D. Vicaria-Clement, M. パナマのクナにおける老化、文化変容、塩分摂取、高血圧。 高血圧 1997、29、171–176。 [相互参照]
29. ノースカロライナ州ホレンバーグ。 ナオミ、F. ダークチョコレートって濃いですか？ 発行部数 2007、116、2360–2362。 [相互参照]
30. Kirschbaum, J. 追加の栄養チョコレートが人間の寿命に及ぼす影響。 栄養学 1998、14、869。 [相互参照]
31. ホルト、RR; ラザロ、SA; サラーズ、MC。 チュー、QY; シュラム、DD; ジョン・F・ハマーストーン。 フラガ、CG; シュミッツ、HH; Keen, CL フラバノールが豊富なココアを摂取した後のヒト血漿中のプロシアニジン二量体 B2 [エピカテキン-(4ベータ-8)-エピカテキン]。 午前。 Ｊ．クリン． ニュートル。 2002、76、798–804。 [相互参照]
32. マサチューセッツ州マルティネス・ゴンザレス。 Martin-Calvo、N. 地中海食と平均寿命。 オリーブオイル、果物、野菜を超えて。 カー。 意見。 クリン。 ニュートル。 メタブ。 ケア 2016、19、401–407。 [相互参照]
33. メノッティ、A. プドゥ、PE; マイアニ、G. Catasta, G. 準絶滅した中年男性集団における生活習慣の関数としての心血管疾患およびその他の死因。 50-年間の追跡調査。 内部。 J. Cardiol 2016、210、173–178。 [相互参照]
34. ベラビア、A. テクトニディス、TG; オルシーニ、N. ウォーク、A. サウスカロライナ州ラーソン 生存の観点から地中海食の利点を定量化。 ユーロ。 Ｊ．Ｅｐｉｄｅｍｉｏｌ． 2016、31、527–530。 [相互参照] [PubMed]
35. ベア州ハーモン。 コロラド州ブーシェイ。 シュヴェツォフ、YB; エティエンヌ、R. リーディ、J. ウィルケンズ、LR。 ル・マルシャン、L. ヘンダーソン、ベルギー; コロネル、LN 多民族コホートにおける主要な食事の質指標と死亡率の関連性: 食事パターン方法プロジェクト。 午前。 Ｊ．クリン． ニュートル。 2015、101、587–597。 [相互参照] [PubMed]
36. レリ、M. スクート、Ｍ． オンタリオ州、ミシガン州。 カラブレーゼ、V. カラブレーゼ、EJ; ブッチャンティーニ、M. Stefani, M. 植物ポリフェノールの健康効果: 分子メカニズム。 内部。 Ｊ．Ｍｏｌ． 科学。 2020、21、1250。[CrossRef] [PubMed]
37. アハマド、J. トゥフィーク、I. マサチューセッツ州カーン; アミーン、MSM。 アンワー、ET; ウチラパシー、S. ミール、SR; Ahmad, J. オレウロペイン: メタボリック シンドロームの治療における天然の抗酸化分子。 フィトテル。 解像度 2019、33、3112–3128。 [相互参照]
38. ピトッツィ、V. ジャコメリ、M. カテラン、D. セルヴィリ、M. タティッチ、A. ビゲリ、A. ドララ、P. Giovannelli, L. ポリフェノールが豊富な長期食餌エクストラバージン オリーブオイルは、マウスの運動調整と文脈記憶における加齢に伴う機能不全を逆転させる：酸化ストレスの役割。 若返り効果 2012、15、601–612。 [相互参照] [PubMed]
39. バイラム、B. オズセリク、B. グリム、Ｓ． ローダー、T. シュレイダー、C. イム、エルンスト。 ワグナー、A.E. グルーン、T. フランク、J. リンバッハ、G. オリーブ油フェノール類が豊富な食事は、Nrf2- 依存性遺伝子発現の誘導により SAMP8 マウスの心臓の酸化ストレスを軽減します。 若返り効果 2012、15、71–81。 [相互参照]
40. ローレッティ、E. ユリアーノ、L. Pratico, D. エクストラバージン オリーブオイルは 3xTg マウスの認知と神経病理を改善する: オートファジーの役割。 アン。 クリン。 翻訳。 ニューロール。 2017、4、564–574。 [相互参照]
41. デラクルス、日本。 サウスカロライナ州デル・リオ。 アレボラ、MM; ロペスビロドレス、JA; ジェブルーニ、N. ゴンザレス・コレア、JA 糖尿病のようなタイプの1-を持つラットの低酸素再酸素化後の脳スライス損傷に対するバージンオリーブオイルとアセチルサリチル酸の効果。 神経科学。 レット。 2010、471、89–93。 [相互参照]
42. Giovannelli, L. 老化プロセスに対するオリーブ油フェノールの有益な効果: 実験的証拠と考えられる作用機序。 ニュートル。 エイジング 2012、1、207–223。 [相互参照]
43. セレリ、G. Deiana, M. エクストラバージン オリーブオイル ポリフェノール: 老化における酸化種と炎症に関連する細胞経路の調節。 Cells 2020、9、478。[CrossRef]
44. ディルバーガー、B. パッソン、M. アッセバーグ、H. シライドス、CV; シュミット、F. シュミードル、T. シーバー、A. Eckert、GP ポリフェノールと代謝産物はげっ歯類と線虫の生存を強化します - ミトコンドリアの影響。 Nutrients 2019、11、1886. [CrossRef]
45. オリーブのポリフェノールと保護に関する健康主張の実証に関する権威、EFS 科学的意見。 EFSA J. 2011、9、2033。
46.サクセナ、S。 Caroni, P. 神経変性疾患における選択的ニューロン脆弱性: ストレッサー閾値から変性まで。 ニューロン 2011、71、35–48。 [相互参照]
47. ケネディ、BK; バーガー、SL; ブルネット、A. カンピシ、J. クエルボ、午前中。 エペル、ES; フランチェスキ、C. ジョージア州リスゴー。 森本、RI; ペッシン、JE; 他。 老年科学: 老化と慢性疾患の関係。 セル 2014、159、709–713。 [相互参照] [PubMed]
48. 王、JC; Bennett, M. 老化とアテローム性動脈硬化: 細胞老化のメカニズム、機能的影響、および潜在的な治療法。 円 解像度 2012、111、245–259。 [相互参照] [PubMed]
49. ケンタッキー州バーナム； マスターズ、CL; ブッシュ、AI 神経変性疾患と酸化ストレス。 ナット。 Rev.DrugDiscov. 2004、3、205–214。 [相互参照]
50. シン、A. ククレティ、R. サソ、L. Kukreti、S. 酸化ストレス: 神経変性疾患の主要な調節因子。 分子 2019、24、1583。[CrossRef]
51. ボルドーニ、L. Gabbianelli, R. ミトコンドリア DNA と神経変性: 食事の抗酸化物質には何らかの役割があるか? 抗酸化物質 2020、9、764. [CrossRef]
52. スカルバート、A. マナハ、C. モランド、C. レメシー、C. ヒメネス、L. 食事ポリフェノールと病気の予防。 クリティカル。 食品科学牧師 ニュートル。 2005、45、287–306。 [相互参照] [PubMed]
53. カンザス州ブラール。 Rupasinghe、HP ポリフェノール: 神経変性疾患における多能性治療薬。 酸化医学。 細胞。 ロンゲブ。 2013、2013、891748。[相互参照]
54. ファルザイ、MH; テワリ、D. モムタズ、Ｓ． アルグエルス、S. Nabavi, SM 神経変性の新規治療戦略として、ポリフェノールによる ERK シグナル伝達経路の標的化。 食品化学。 有毒。 内部。 J.Pub. Br. Ind.Biol. 解像度 准教授 2018、120、183–195。 [相互参照] [PubMed]
55. ファルザイ、MH; バラムソルタニ、R. アッバサバディ、Z. ブレイディ、N. Nabavi, SM 加齢に伴う認知機能低下の予防における緑茶カテキンの役割: 薬理学的標的と臨床的観点。 Ｊ．Ｃｅｌｌ． 生理。 2019、234、2447–2459。 [相互参照] [PubMed]
56.アーボ、BD; アンドレ・ミラル、C. ナスレ・ナセル、RG; シミット、LE; サントス、MG; コスタ・シルバ、D. アラバマ州ムッシーロ・バイシュ。 マサチューセッツ州ホート、アルツハイマー病およびパーキンソン病の潜在的な治療法としてのレスベラトロール誘導体。 正面。 神経科学の老化。 2020、12、103。[相互参照]
57. ジュリアーノ、C. セリー、S. Blandini, F. パーキンソン病におけるポリフェノールの潜在的な治療効果: in vivo および in vitro の前臨床研究。 神経再生。 解像度 2021、16、234–241。 [相互参照] [PubMed]
58. マラール、DS; ミシガン州プラサント; ジェイ・エム・ブリムソン。 シャリカ、R. シヴァマルティ、理学士。 チャイヤスト、C. Tencomnao, T. パーキンソン病における緑茶 (Camellia sinensis) の神経保護特性: レビュー。 分子 2020、25、3926。[CrossRef]
59. エレハルデ、E. ビジャラン、MC; アロンソ、RM 運動誘発酸化ストレスに対するブドウポリフェノールの補給。 Ｊ．Ｉｎｔ． 社会 スポーツ栄養士。 2021、18、3. [CrossRef]
60. マサチューセッツ州チホノバ; チホノバ、NG; テンディトニク、MV; オブシュコワ、MV; アコピアン、AA; ニセコ州ドゥブロビナ。 アムスティスラフスカヤ、TG; Khlestkina, EK マウスの寿命および神経変性パーキンソン病様障害に関連する神経炎症性変化に対するブドウポリフェノールの影響。 分子 2020、25、5339。 [CrossRef]
61. シャルマ、D. セティ、P. フセイン、E. Singh, R. クルクミンは、成体および老ラットの脳領域における酸化ストレス、Na プラス、K プラス ATPase、プロテインキナーゼ C のアルミニウム誘発性老化関連変化を抑制します。 バイオジェロントロジー 2009、10、489–502。 [相互参照]
62. ビトゥ・ピント、N. ダ・シルバ・アレクサンドル、B. ネベス、KR; シルバ、ああ。 レアル、LK; Viana, GS 6-パーキンソン病の OHDA モデルにおける Camellia sinensis (緑茶) とその主な生理活性成分であるエピカテキンおよびエピガロカテキンガレートからの標準化抽出物の神経保護特性。 エヴィド。 ベースの相補オルタネート。 医学。 eCAM 2015、2015、161092。[CrossRef] [PubMed]
63. 岩田和也； ウー、Q。 フェルドゥーシ、F. 佐々木和夫 富永和也； 内田 宏； 荒井裕也; ゼーレ、フロリダ州。 Isoda, H. サトウキビ (Saccharum officinarum L.) トップエキスは老化モデル SAMP8 マウスの認知機能低下を改善します: 神経発達とエネルギー代謝の調節。 正面。 セル開発 バイオル。 2020、8、573487。[CrossRef] [PubMed]
64. 佐々木和夫; デイビス、J. ドルダン、NG; 荒尾、S. フェルドゥーシ、F. ゼーレ、フロリダ州。 Isoda, H. 3,4,5-トリカフェオイルキナ酸は成体神経新生を誘導し、老化モデル老化促進うつ伏せ 8 マウスの学習と記憶の欠損を改善します。 エイジング 2019、11、401–422。 [相互参照]
65. リャン、Z. 張B. スー、WW。 ウィリアムズ、PG; Li、QX C-グリコシルフラボンは、GSK3 阻害を通じてタウのリン酸化とアミロイド神経毒性を軽減します。 ACS Chem. 神経科学。 2016、7、912–923。 [相互参照] [PubMed]
66.ドルドラ、PV。 ジュベール、E. ミュラー、CJF。 ロウ、J. Johnson, R. ルイボスフラボノイドとフェニルピルビン酸-2-O-ベータ-D-グルコシドの高血糖誘発酸化ストレスと心臓病の心臓保護効果。 ニュートル。 メタブ。 2017、14、45。 [相互参照]
67. ジクブ、K. ドルドラ、PV。 ジュベール、E. ミュラー、CJF。 ロウ、J. ティアーノ、L. ンカンブル、BB; AP 州カッポ。 マジブコ・ムベジェ、SE イソオリエンチン: さまざまな代謝合併症を改善する可能性のある食事性フラボン。 薬理学。 解像度 2020、158、104867。[相互参照]
68. イエス、CCM。 アラウーホ、MH; シモン、T. ラサンスカイア、EB; バース、T. ムジタノ、MF。 サウスカロライナ州ピント Vitex 一夫多妻制の天然製品とその抗マイコバクテリアおよび抗炎症作用。 ナット。 製品。 解像度 2020 年 1 ～ 5 日。 [相互参照]
69.マ、L。 張B. リュー、J. チャオ、C. リュウ、Y. リー、S。 Lv, H. イソオリエンチンは、AMPK/AKT/Nrf2 シグナル伝達経路を活性化することにより、6-OHDA 誘発性神経毒性に対する保護効果を発揮します。 食の機能 2020、11、10774–10785。 [相互参照]
70. グルワル、R. ロイツェル、M. ディルバーガー、B. ヘイン、H. ゾッツェル、J. マルクス、S. トレッツェル、J. サラフェディノフ、A. フックス、C. Eckert, GP 精製オレオカンタールとリグストロシドは、初期のアルツハイマー病と脳老化のモデルにおけるミトコンドリア機能不全から保護します。 経験値 ニューロール。 2020、328、113248。[相互参照]
71. シェーファー、S. ミュラー、私たち。 Eckert、GP オリーブ工場廃水抽出物とその主成分ヒドロキシチロソールの PC12 細胞における細胞保護効果。 薬理学。 解像度 2010、62、322–327。 [相互参照]
72. シェーファー、S. ポドスタワ、M. ヴィジオリ、F. ボガニ、P. ミュラー、私たち。 Eckert、GP ヒドロキシチロソールが豊富なオリーブ工場廃水抽出物は、インビトロおよびエクスビボで脳細胞を保護します。 Ｊ．アグリック． 食品化学。 2007、55、5043–5049。 [相互参照] [PubMed]
73. エツカン、S. ミュラー、私たち。 ウッド、WG; Eckert、GP、高齢の C57BL/6 マウスの脳における脂質イソプレノイドおよび Rho タンパク質レベルに対する 7,8- ジヒドロキシフラボンの効果。 ニューロモル。 医学。 2020 年 1 月 1 日から 10 日まで。 [相互参照]
74. フィッツェンバーガー、E. デュージング、DJ。 マルクス、C. ボル、M. リュエルセン、Ｋ． Wenzel, U. ポリフェノールのケルセチンは、SIR-2.1、DAF-12、およびプロテアソームに依存する熱ストレス下でのグルコース誘発生存率低下から線虫線虫の mev-1 変異体を保護します。活動。 モル。 ニュートル。 食品研究所 2014、58、984–994。 [相互参照]
75. フィエル、CJ; カリフォルニア州ウィルソン。 リー、VMY; Klein、PS GSK-3 はアルツハイマー病のアミロイドペプチドの生成を調節しています。 ネイチャー 2003、423、435–439。 [相互参照]
76. コラロワ、M. ガルシア・シエラ、F. バルトス、A. リクニー、J. Ripova, D. アルツハイマー病におけるタウタンパク質の構造と病理学。 内部。 Ｊ．アルツハイマー病Ｄｉｓ． 2012、2012、731526。[相互参照]
77. 秦、XY。 チェン、Y. Yu, LC ラットの初代培養前頭前野皮質ニューロンに対する細胞内アミロイドβ誘発毒性に対する緑茶ポリフェノールの保護の可能性。 神経科学。 レット。 2012、513、170–173。 [相互参照]
78. チャコル、J. ミウェク、M. ガリニアック、S. St ˛epie 'n、K.; ドズガン、M. Moło ´n, M. コーヒーは抗酸化特性により酵母の寿命を延ばします。 内部。 Ｊ．Ｍｏｌ． 科学。 2020、21、9510。[CrossRef]
79. チョー、B.-H. チョイ、S.-M. キム、J.-T. Kim、BC 薬物治療を受けていない初期のパーキンソン病におけるコーヒー摂取と非運動症状に関する協会。 パーキンソニズム関連。 障害。 2018、50、42–47。 [相互参照]
80. ソカラ、K. スコパ、A. セレフコ、A. ポレスザック、E. Wla 'z, P. コーヒー生理活性化合物の神経保護効果: レビュー。 内部。 Ｊ．Ｍｏｌ． 科学。 2021、22、107. [CrossRef]
81. ガオ、L. リー、X。 孟、S. マ、T。 ワン、L. Xu, S. クロロゲン酸は、mTOR/TFEB シグナル伝達経路を介して A (25-35) 誘発オートファジーと認知障害を軽減します。 薬物の研究 開発者 それで。 2020、14、1705 ～ 1716 年。 [相互参照] [PubMed]
82. ワン、J. フェルッツィ、MG; ホー、L。 ブラウント、J. ジャンル、EM; ゴン、B. パン、Y. ジョージア州ゴーダ; ラフテリー、D. アリエタ＝クルーズ、I. 他。 アルツハイマー病治療のための脳標的プロアントシアニジン代謝産物。 J. Neurosci. 2012、32、5144–5150。 [相互参照]
83. バージニア州サザーランド。 ラーマン、RM; Appleton, I. 虚血誘発神経変性に焦点を当てた、緑茶カテキンの作用機序。 Ｊ．Ｎｕｔｒ． 生化学。 2006、17、291–306。 [相互参照] [PubMed]
84.ガドカリ、PV。 Balaraman、M. カテキン: ソース、抽出、およびカプセル化: レビュー。 食品バイオプロド。 プロセス。 2015、93、122–138。 [相互参照]
85.リー、Q。 趙、HF; 張、ZF; リュー、ZG; ペイ、XR; ワン、JB; Li, Y. 緑茶カテキンの長期投与は、海馬のAβ1-42オリゴマーを減少させ、シナプス可塑性関連タンパク質を上方制御することにより、老化が促進されたマウス傾向-8マウスの空間学習と記憶障害を防止する。 神経科学 2009、163、741–749。 [相互参照]
86。 パラウフ、Ｋ． リンバッハ、G. ラップ首相。 チン、Ｄ． Wolf、IM レスベラトロールとモデル生物の寿命。 カー。 医学。 化学。 2016、23、4639–4680。 [相互参照]
87.デュ、LL; 謝、JZ; チェン、XS; リー、XH; フロリダ州コング。 ジャン、X。 マ、ZW; 王、JZ; チェン、C. Zhou, XW サーチュイン 1 の活性化は、ラット海馬における脳室ストレプトゾトシン誘発タウ過剰リン酸化と認知損傷を軽減します。 2014 年、36 歳、613 ～ 623 歳。 [相互参照] [PubMed]
88. フランチェスキ、C. カプリ、M. モンティ、D. ジュンタ、S. オリビエリ、F. セビーニ、F. パヌルジア議員。 インビディア、L. セラニ、Ｌ． スクルティ、M. 他。 炎症と抗炎症: 老化と長寿についての体系的な視点が、ヒトでの研究から明らかになりました。 メカ。 高齢化開発 2007、128、92–105。 [相互参照] [PubMed]
89. ムーサ、C. ヘブロン、M. ファン、X。 アン、J。 リスマン、RA。 アイセン、PS; Turner, RS レスベラトロールは神経炎症を調節し、アルツハイマー病における適応免疫を誘導します。 J. Neuroinflamm. 2017、14、1. [CrossRef] [PubMed]
90. PE、クラビホ。 Frauwirth, KA アネルギー性 CD8 プラス T リンパ球は、p65 リン酸化とアセチル化の欠陥により NF-κB 活性化を損なっています。 Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． 2012、188、1213–1221。 [相互参照]
91. ニウ、Y. ナ、L。 フェン、R. ゴン、L. 趙、Y. リー、Q。 リー、Y。 Sun, C. 植物化学物質である EGCG は、健康なラットの肝臓と腎臓の機能損傷を軽減し、加齢に伴う炎症と酸化ストレスを改善することで寿命を延ばします。 老化細胞 2013、12、1041–1049。 [相互参照] [PubMed]
92. クプトニラツァイクル、V. タナクムトーン、S. チンスワンワタナクル、P. ワッタナモンコンシル、L. Thamlikitkul、V. 変形性膝関節症患者におけるクルクマ ドメスティカ抽出物の有効性と安全性。 J.オルターン。 補完的な医学。 2009、15、891–897。 [相互参照]
93.デ・アラウーホ、FF; デ・パウロ・ファリアス、D. アイオワ州ネリ沼。 パストーレ氏、GM ポリフェノールとその応用: 食品化学とイノベーションの可能性におけるアプローチ。 食品化学。 2020、338、127535。[相互参照]
94. SA州ハインツ。 ワシントン州ヘンソン。 メリーランド州オースティン。 ジン、F. ニーマン DC ケルセチン補給と上気道感染症: ランダム化コミュニティ臨床試験。 薬理学。 解像度 2010、62、237–242。 [相互参照]
95. ユアン、L. ハン、X。 リー、W。 レン、D. Yang, X. イソオリエンチンは、高フルクトースを与えられたマウスの脂質代謝、抗酸化能力、炎症性サイトカイン放出を調節することにより、高脂血症と肝損傷を予防します。 Ｊ．アグリック． 食品化学。 2016、64、2682–2689。 [相互参照]
96. 張L. ワン、X。 張、Ｌ． ヴァーガス、C. Si, H. クルクミンとルテオリンの組み合わせは、ヒト血管細胞およびマウスにおける TNF-α 誘発血管炎症を相乗的に阻害します。 Ｊ．Ｎｕｔｒ． 生化学。 2019、73、108222。[CrossRef] [PubMed]
97. Harman, D. 生物時計: ミトコンドリア? 混雑する。 ジェリアトル。 社会 1972、20、145–147。 [相互参照] [PubMed]
98. アリゾナ州リンナン。 マルズキ、Ｓ． 小沢哲也; 田中 M. 老化と変性疾患の重要な原因としてのミトコンドリア DNA 変異。 ランセット 1989、1、642–645。 [相互参照]
99. ネナディス、N. 王、LF; ツィミドウ、M. Zhang, HY ABTS(* plus ) アッセイを使用したフェノール化合物の除去活性の推定。 Ｊ．アグリック． 食品化学。 2004、52、4669–4674。 [相互参照]
100. ルー、M. カイ、YJ; ファング、JG; 周、YL。 リュウ、ZL。 Wu、LM レスベラトロールとその類似体の抗酸化作用の効率と構造活性関係。 ファーマジー 2002、57、474–478。 [パブメッド]
101. 横沢哲也; チェン、CP; ドン、E。 田中哲也; 野中、GI; 西岡 I. 1,1-ジフェニル-2 ピクリルヒドラジル ラジカルに対するタンニンとフラボノイドの阻害効果に関する研究。 生化学。 薬理学。 1998、56、213–222。 [相互参照]
102. カオ、G. ソフィック、E. 以前、RL フラボノイドの抗酸化作用と酸化促進作用: 構造活性関係。 フリーラジカル。 バイオル。 医学。 1997、22、749–760。 [相互参照]
103. クアラルンプール州ウルフ。 Liu、RH 細胞抗酸化活性アッセイにおけるフラボノイドの構造と活性の関係。 Ｊ．アグリック． 食品化学。 2008、56、8404–8411。 [相互参照] [PubMed]
104. モダック、B. ミシガン州コントレラス。 ゴンザレス・ニロ、F. Torres, R. Heliotropium sinuatum の樹脂状浸出液から単離されたフラボノイドの構造と抗酸化活性の関係。 バイオオーグ医学。 化学。 レット。 2005、15、309–312。 [相互参照] [PubMed]
105. 加藤明； 那須直樹； 竹林和也； 安達、私; 南、Y. サナエ、F. 浅野直也； ワトソン、AA; Nash, RJ グリコーゲンホスホリラーゼの潜在的阻害剤としてのフラボノイドの構造活性関係。 Ｊ．アグリック． 食品化学。 2008、56、4469–4473。 [相互参照]
106. リン、チェコ共和国; 朱、CC; 胡、M。 ウー、アリゾナ州。 バイル、ZD; Kangsa, SQ 除虫菊から単離されたフラボノイドに関する in vitro での抗酸化活性の構造活性関係。 J.インターカルト。 エスノファーマコール。 2014、3、123–127。 [相互参照] [PubMed]
107. Asseburg、H. シェーファー、C. ミュラー、M. ヘグル、Ｓ． ポーランド、M. ベレッセム、D. ボルキエッリーニ、M. プランク、C. Eckert, GP C57BL/6J マウスの加齢に伴うミトコンドリア機能不全、記憶力、寿命に対するブドウ皮抽出物の効果。 ニューロモル。 医学。 2016、18、378–395。 [相互参照]
108. シン、S. ダス・ロイ、L. Giri、S. クルクミンは、マウスの雄生殖細胞におけるメトロニダゾールおよび X 線誘発性の細胞毒性および酸化ストレスを保護します。 プラハ医学。 議員 2015、114、92–102。 [相互参照]
109. ロイ、S. サニグラヒ、S. ヴァデパリ、RP; ゴーシュ、B. Pusp, P. メトトレキサートとエピガロカテキンの新しい組み合わせは、アジュバント関節炎ラットの炎症誘発性軟骨サイトカインの過剰発現を弱め、抗酸化状態を調節します。 炎症 2015、35、1435–1447。 [相互参照]
110. ウイグル族、R. ヤグラムルカ、M. アルコック、オハイオ州。 ジェンク、A. ソングール、A. ユーコック、Ｋ． オーゼン、OA ラットのエタノールによって誘発される精巣損傷に対するケルセチンと魚 n-3 脂肪酸の効果。 アンドロロギア 2013。 [CrossRef]
111. ヤン、Y. ウー、ZZ; チェン、YL; リン、W。 Qu, C. レスベラトロールは、SOD/MDA 活性を調節し、Bcl-2 発現を活性化することにより、網膜色素上皮細胞の酸化損傷から保護します。 ユーロ。 医学牧師 薬理学。 2019、23、378–388。 [相互参照] [PubMed]
112. 鄭 Y. リュウ、Y. ゲー、J。 ワン、X。 リュー、L. ブ、Z。 Liu, P. レスベラトロールは、カタラーゼ、SOD-1、および HO-1 の発現を増加させることにより、H2O2 - 誘発酸化ストレスからヒト水晶体上皮細胞を保護します。 モル。 ヴィス。 2010、16、1467–1474。
113.ヤン、XH。 リー、L。 シュエ、YB; 周、XX; Tang, JH イカリソウ思春期由来のフラボノイド: 抽出とメカニズム、抗酸化能力、キイロショウジョウバエの CAT および GSH-Px に対する効果。 ピア J. 2020、8、e8361。 [相互参照] [PubMed]
114. サン、S. 趙、X。 Zhao, L. [MCF ヒト乳がん細胞における NOS、GSH-Px 活性および NO、GSH、MDA 含有量に対するゲニステインの影響]。 魏盛燕九、2004、33、468–469。 [パブメッド]
115. ロレンドー、D. デューリー、L. ジェヌー・バスティド、E. レサーフ・シュミット、F. シモエス・ピレス、C. ペンシルベニア州カープト。 テルー、R. マグナード、S. ディ・ピエトロ、A. ブーメンジェル、A. 他。 GSH 流出を介したフラボノイドおよび誘導体に対する耐性 MRP1- 過剰発現細胞の副次的感受性。 生化学。 薬理学。 2014、90、235–245。 [相互参照]
116. 小林正樹； 山本 M. 抗酸化遺伝子調節の Nrf2-Keap1 経路を活性化する分子機構。 酸化防止。 レドックスシグナル。 2005、7、385–394。 [相互参照] [PubMed]
117.ウー、CC; スー、MC。 シェ、CW; リン、JB; PH、ライ。 Wung, BS ホスファチジルイノシトール3-キナーゼ/AktおよびERK経路を介したエピガロカテキン-3-ガレートによるヘムオキシゲナーゼ-1の上方制御。 生命科学。 2006、78、2889–2897。 [相互参照]
118. カリフォルニア州ラック。 クラウセン、M. ファーマン、G. ローマー、L. シュルツ、A. ピュフェ、T. ヴェツィッヒ、V. ペイプ、M. ヘルデゲン、T. メアリー、ゴッツ ルテオリンは、MPP および ERK 依存性 Keap1-Nrf2-ARE 経路を介した誘導毒性からラット PC12 および C6 細胞を保護します。 J. Neural Transm. 補足 2007. [クロスリファレンス]
119. SA州ラッシュワース。 RM、オグボーン。 カリフォルニア州キャラランボス。 オコンネル、マサチューセッツ州 ヒト単球におけるクルクミン誘導性抗酸化応答エレメント媒介遺伝子発現におけるプロテインキナーゼ C デルタの役割。 生化学。 生物物理学。 解像度 共通。 2006、341、1007–1016。 [相互参照] [PubMed]
120. ザ州シャー州。 リー、RC; アーマド、アスファルト州。 ケンスラー、TW 山本正人; ビスワル、S. Dore, S. フラバノール (-)-エピカテキンは、Nrf2/HO1 経路を介した脳卒中損傷を防ぎます。 J. Cereb Blood Flow Metab 2010、30、1951–1961。 [相互参照]
121. 謝、TC; ルー、X。 ワン、Z。 Wu, JM ヒト K562 細胞におけるレスベラトロールによるキノンレダクターゼ NQO1 の誘導には、抗酸化応答要素 ARE が関与し、転写因子 Nrf2 の核移行を伴います。 医学。 化学。 2006、2、275–285。 [相互参照] [PubMed]
122. キム、JY; ニューヨーク州パーク。 リー、KP; リー、SM; カン、台湾; キム、HJ; ドー、SH; キム、SY; Kwon, KS 加齢に伴う骨格筋におけるマイクロRNA-mRNA制御ネットワークのゲノムワイドプロファイリング。 エイジング 2014、6、524–544。 [相互参照]
123. ミレンコビッチ、D. デヴァル、C. グーラントン、E. ランドリエ、JF; スカルバート、A. モランド、C. Mazur, A. apoE 欠損マウスにおける食事性ポリフェノールによる miRNA 発現の調節: ポリフェノールの作用の新しいメカニズム。 PLoS ONE 2012、7、e29837。 [相互参照]
124. ガンジー、サウスウェールズ州; キム、K。 ラーセン、L. ローゼングレン、RJ; セーフ、S. クルクミンおよび合成類似体は、マイクロ RNA を標的とすることで活性酸素種を誘導し、特異性タンパク質 (Sp) 転写因子を減少させます。 BMC Cancer 2012、12、564。[CrossRef] [PubMed]
125. ボエッシュ・サアダマンディ、C. ワグナー、A.E. ウルフラム、Ｓ． リンバック、G. インビボでのマウス肝臓の炎症性遺伝子発現に対するケルセチンの効果 - 酸化還元因子 1、miRNA-122、および miRNA-125 の役割 b. 薬理学。 解像度 2012、65、523–530。 [相互参照] [PubMed]
126. アンケオ、P. デシュパンデ、SS; チー、B. リュウ、YX; パーク、YC; ジョン、BH。 尾崎正人; Irani, K. 酸化還元因子-1: 内皮の酸化ストレスとアポトーシスの調節における核外の役割。 細胞死は異なります。 2002、9、717–725。 [相互参照]
127. バーゼガー、A. Moosavi-Movahedi、AA クルクミンの細胞内 ROS 保護効率とフリーラジカル消去活性。 PLoS ONE 2011、6、e26012。 [相互参照] [PubMed]
128. ミレンコビッチ、D. ジュード、B. Morand, C. 生物学的効果の基礎となるポリフェノールの分子標的としての miRNA。 フリーラジカルバイオル。 医学。 2013、64、40–51。 [相互参照]
129. ヴィナ、J. ボラス、C. ミケル、J. 老化の理論。 IUBMB ライフ 2007、59、249–254。 [相互参照] [PubMed]
130. ナイバーグ、L. Pudas、S. 記憶老化の成功。 アンヌ。 サイコル牧師。 2019、70、219–243。 [相互参照]
131. ブラゴスクロニー、MV エイジング: ROS または TOR。 細胞周期 2008、7、3344–3354。 [相互参照]
132. Harman, D. 老化: フリーラジカルと放射線化学に基づく理論。 J.ジェロントール。 1956、11、298–300。 [相互参照]
133. チャンス、B. シエス、H. Boveris, A. 哺乳類の臓器におけるヒドロペルオキシドの代謝。 生理。 改訂版、1979 年、59、527–605。 [相互参照]
134. チャン、TS; チョー、CS; パーク、S。 ユウ、S。 カン、サウスウェールズ州。 Rhee、SG ペルオキシレドキシン III、ミトコンドリア特異的ペルオキシダーゼは、ミトコンドリアによるアポトーシス シグナル伝達を制御します。 Ｊ．Ｂｉｏｌ． 化学。 2004、279、41975–41984。 [相互参照] [PubMed]
135. ドディグ、S. チェペラク、I. パヴィック、I. 老化と老化の特徴。 生化学。 医学。 2019、29、030501。[相互参照]
136. ヘランツ、N. Gil、J. 細胞老化のメカニズムと機能。 Ｊ．クリン． 投資する。 2018、128、1238–1246。 [相互参照]
137. ビセンシオ、JM; ガッルッツィ、L. タジェディン、N. オルティス、C. クリオロ、A. タスデミール、E. モルセリ、E. ベン・ユーンズ、A. マイウリ、MC。 ラヴァンデロ、S. 他。 老化、アポトーシス、あるいはオートファジー? 損傷した細胞がその経路を決定しなければならないとき - ミニレビュー。 老年学 2008、54、92–99。 [相互参照] [PubMed]
138. 柳 S. 坪内博司； 三浦 明; 松尾 明; 松本直樹； 中里 M. 呼吸器感染症のリスクを高める高齢者の肺炎および加齢に伴う肺疾患における細胞老化の影響。 内部。 Ｊ．Ｍｏｌ． 科学。 2017、18、503. [相互参照]
139. ローレス、C. ワン、C. ジャーク、D. メルツ、A. ズグリニッキ、T. Passos, JF 細胞老化のマーカーの定量的評価。 経験値 ジェロントル。 2010、45、772–778。 [相互参照] [PubMed]
140. 曽根弘； Ｋａｗａｗａ，Ｙ．膵臓ベータ細胞の老化は、高脂肪食誘発糖尿病マウスにおける２型糖尿病の発症に寄与する。 糖尿病学 2005、48、58–67。 [相互参照]
141. ファークイスト、F. サイジョンマー、O. Strandberg, T. 心血管疾患における老化とテロメア短縮の役割。 ナット。 カーディオール牧師。 2013、10、274–283。 [相互参照]
142. 南野哲也; 折茂、正。 清水私； 国枝哲也； 横山正史 伊藤哲也; 野島明； 鍋谷 明; 尾池、Y. 松原博司; 他。 インスリン抵抗性の調節における脂肪組織 p53 の重要な役割。 ナット。 医学。 2009、15、1082–1087。 [相互参照] [PubMed]
143. ウンタールガウアー、H. ハンペル、B. ツヴェルシュケ、W. Jansen-Durr、P. ヒト内皮細胞の老化に伴う細胞死: 酸化ストレスの役割。 経験値 ジェロントル。 2003、38、1149–1160。 [相互参照] [PubMed]
144. ジョセフ、JA; Cutler, RC 老化におけるシグナル伝達の変化と細胞損失における酸化ストレスの役割。 アン。 ニューヨークアカデミー。 科学。 1994、738、37–43。 [相互参照]
145. ルイジアナ州ヒクソン。 ランギ・プラタ、LGP。 南オーストラリア州ボバート。 エヴァンス、TK; ジョルガゼ、N. ハシュミ、サウスカロライナ州。 ハーマン、SM; ジェンセン、メリーランド州。 ジア、Q。 クアラルンプール州ジョーダン。 他。 老化細胞破壊薬はヒトの老化細胞を減少させる：糖尿病性腎臓病患者を対象としたダサチニブとケルセチンの臨床試験からの予備報告。 EBioMedicine 2019、47、446–456。 [相互参照]
146.ジャスティス、JN。 ナンビア、午前中。 チコニア、T. ルブラッスール、NK; パスクアル、R. ハシュミ、サウスカロライナ州。 プラタ、L. マスターナック、MM; クリチェフスキー、SB; ムシ、N. 他。 特発性肺線維症における老化細胞破壊治療薬：ファースト・イン・ヒト、オープンラベル、パイロット研究の結果。 EBioMedicine 2019、40、554–563。 [相互参照] [PubMed]
147. メニカッチ、B. シプリアーニ、C. マルゲリ、F. モカリ、A. Giovannelli, L. オリーブ フェノールによるヒト線維芽細胞の老化関連炎症表現型の調節。 内部。 Ｊ．Ｍｏｌ． 科学。 2017、18、2275。[CrossRef] [PubMed]
148. カツキ、M. コンドロジャンニ、N. チノウ、I。 リベット、AJ。 Gonos, ES オリーブの構成成分オレウロペインは、インビトロでプロテアソーム刺激特性を示し、ヒト胎児線維芽細胞の寿命延長をもたらします。 若返り効果 2007、10、157–172。 [相互参照]
149. ラヒミファード、M. バエリ、M. バハダール、H. モイニ・ノデ、S. ハリド、M。 ハギ・アミンジャン、H. モハマディアン、H. Abdollahi, M. 老化と糖尿病の調節における没食子酸の治療効果。 インビトロ研究。 分子 2020、25、5875。[CrossRef]
150. ユング、HJ; Suh, Y. 老化および老化関連疾患における循環 miRNA。 J.ジュネ。 ゲノミクス 2014、41、465–472。 [相互参照]
151. スミス・ヴィコス、T. Slack、FJ MicroRNA、および老化におけるそれらの役割。 J. Cell Sci. 2012、125、7–17。 [相互参照] [PubMed]
152. ヴェルマ、P. オーガスティン、ジョージア州。 アンマル氏、MR。 田代 明; Cohen, SM グルタミン酸興奮毒性の制限によって媒介されるマイクロRNA miR-1000の神経保護的役割。 ナット。 神経科学。 2015、18、379–385。 [相互参照]
153. ユング、HJ; リー、KP; ミルホランド、B. シン、YJ; カン、JS。 カンザス州クォン。 Suh, Y. 加齢に伴う誘導性および正常マウス筋萎縮における骨格筋および血清の包括的な miRNA プロファイリング。 J.ジェロントール。 ビオール。 科学。 医学。 科学。 2017、72、1483–1491。 [相互参照] [PubMed]
154. フォン、Q. 鄭、Ｓ． Zheng, J. 骨リモデリングにおけるマイクロRNAの新たな役割と骨粗鬆症に対するその治療的意義。 バイオサイエンス。 議員 2018、38. [相互参照]
155. シャオ、H. ヤン、L. ワン、L. タン、B. ワン、J. Li, Q. MicroRNA-34a は、TNF-α 発現の制御を通じてオートファジーを阻害することにより、虚血再灌流損傷から心筋細胞を保護します。 生化学。 セルバイオル。 2018、96、349–354。 [相互参照]
156. ヒエ州キンザー； Pincus, Z. 長寿と老化プロセスの調節因子としてのマイクロRNA。 ハム。 ジュネット。 2020、139、291–308。 [相互参照] [PubMed]
157. グー、H. ウー、W。 ユアン、B. タン、Q。 グオ、D. チェン、Y。 シア、Y。 胡、Ｌ． チェン、D. シャ、J。 他。 ゲニステインは、Limk1 を標的とすることで miR-20a を上方制御し、精子形成を妨害します。 オンコターゲット 2017、8、58728–58737。 [相互参照] [PubMed]
158. ミレンコビッチ、D. ウェストバージニア州バーグヘ。 モランド、C. クロード、Ｓ． ファン・デ・サント、A. ゴレッセン、S. モンフーレ、LE; チルマミラ、CS; デクラーク、Ｋ． シッチ、KSV; 他。 エピカテキン代謝物に曝露された内皮細胞における栄養(エピ)ゲノム変化のシステム生物学ネットワーク解析。 科学。 Rep. 2018、8、15487。[相互参照]
159. トメ・カルネイロ、J. ラロサ、M. ミネソタ州ヤネス・ガスコン。 ダバロス、A. ジル・サモラーノ、J. ゴンザルベス、M. ガルシア アルマグロ、フロリダ州。 ルイス・ロス、JA; トーマス・バーベラン、FA; エスピン、JC。 他。 レスベラトロールを含むブドウ抽出物を1年間摂取すると、冠状動脈疾患を伴う2型糖尿病患者および高血圧患者の末梢血単核細胞における炎症関連マイクロRNAおよびサイトカインの発現が調節されます。 薬理学。 解像度 2013、72、69–82。 [相互参照]
160. Feletou、M. 内皮依存性過分極化および内皮機能不全。 J. Cardiovasc. 薬理学。 2016、67、373–387。 [相互参照]
161. ソロヴィエフ、AI; Kizub、IV 電離放射線によって誘発される血管機能障害のメカニズムとその薬理学的補正の可能性のある標的。 生化学。 薬理学。 2019、159、121–139。 [相互参照]
162. プーカ、AA; カリッゾ、A. フェラーリオ、A. ヴィラ、F. Vecchione, C. 内皮の一酸化窒素シンターゼ、血管の完全性、そしてヒトの並外れた長寿。 フリーラジカル。 解像度 2012 年 9 月 26 日。 [CrossRef]
163. シュルツ、E. ジャンセン、T. ウェンゼル、P. ダイバー、A. Munzel, T. 一酸化窒素、テトラヒドロビオプテリン、酸化ストレス、および高血圧における内皮機能不全。 酸化防止。 レドックスシグナル。 2008、10、1115–1126。 [相互参照] [PubMed]
164. シュルツ、E. ゴリ、T。 Munzel, T. 高血圧における酸化ストレスと内皮機能不全。 高血圧。 解像度 2011、34、665–673。 [相互参照]
165. ファリア、AM; パパディミトリウ、A. KC、シルバ。 ロペス・デ・ファリア、JM。 Lopes de Faria, JB 脱共役内皮一酸化窒素シンターゼは、実験的糖尿病において緑茶によりテトラヒドロビオプテリンレベルを再確立することにより改善されます。 糖尿病 2012、61、1838–1847。 [相互参照]
166. ランドメッサー、U. ディカロフ、S. 価格、SR; マッキャン、L. 深井哲也； オランダ、SM; ミッチ、私たち。 Harrison, DG テトラヒドロビオプテリンの酸化は、高血圧における内皮細胞の一酸化窒素シンターゼの脱共役につながります。 Ｊ．クリン． 投資する。 2003、111、1201–1209。 [相互参照]
167. ストックレット、JC; シャテーニョ、T. ンディアエ、M. オーク、MH; エル・ベドウイ、J. シャテーニョ、M. Schini-Kerth、VB 食事ポリフェノールによる血管保護。 ユーロ。 Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ． 2004、500、299–313。 [相互参照]
168. グラッシ、D. ネコツィオーネ、S. リッピ、Ｃ． クローチェ、G. ヴァレリ、L. パスカレッティ、P. デジデリ、G. ブランバーグ、JB; Ferri, C. ココアは、血圧とインスリン抵抗性を低下させ、高血圧患者の内皮依存性の血管拡張を改善します。 高血圧 2005、46、398–405。 [相互参照] [PubMed]
169. ロペスセプルベダ、R. ヒメネス、R. ロメロ、M. MJ、ザルスエロ。 サンチェス、M. ゴメス・グスマン、M. バルガス、F. オバレ、F. ザルスエロ、A. ペレス・ビスカイノ、F. 他。 ワインポリフェノールは、雌の自然発症高血圧ラットの大血管の内皮機能を改善します。 高血圧 2008、51、1088–1095。 [相互参照]
170. 徐、JW; 池田和也; Yamori, Y. 典型的なアントシアニン色素であるシアニジン-3-グルコシドによる内皮一酸化窒素シンターゼの上方制御。 高血圧 2004、44、217–222。 [相互参照]
171. ウー、T.-W. ゼン、L.-H. ウー、J. ファン、K.-P. モーリン: 心臓血管系の 3 種類のヒト細胞をオキシラジカル損傷から保護する木質顔料。 生化学。 薬理学。 1994、47、1099–1103。 [相互参照]
172. 田口和也； タノ、I。 金子直也； 松本 哲也; 小林 T. 植物ポリフェノールのモリンとケルセチンは、異なる経路を通じて糖尿病マウスの大動脈における一酸化窒素の生成を助けます。 バイオメッド。 薬剤師。 2020、129. [相互参照]
173. 田口和也; 肥田正人; 長谷川正； 松本 哲也; 小林 T. 食餌性ポリフェノール モリンは、Akt/eNOS 経路を活性化することにより、糖尿病マウス モデルの内皮機能不全を救済します。 モル。 ニュートル。 食品研究所 2016、60、580–588。 [相互参照] [PubMed]
174. バウアー、JA; シンクレア、DA レスベラトロールの治療的可能性: in vivo での証拠。 ナット。 Rev.DrugDiscov. 2006、5、493–506。 [相互参照]
175. ブラダマンテ、S. バレンギ、L. Villa、A. レスベラトロールの心血管保護効果。 心臓血管。 Drug Rev. 2004、22、169–188。 [相互参照] [PubMed]
176. ワレラス、T. デッカート、G. テルネス、T. アンダーソン、H. リー、H。 ウィッテ、K. Forstermann, U. 赤ワインに含まれるポリフェノール性フィトアレキシンであるレスベラトロールは、内皮の一酸化窒素シンターゼの発現と活性を高めます。 回覧 2002、106、1652–1658。 [相互参照] [PubMed]
177. ソング、J. おい。; ルオ、C. フェン、B. ラン、F. 徐、H。 Ｃｉ、Ｚ． 徐、R. ハン、L. Zhang, D. プロトカテク酸の薬理学における新たな進歩: 日常の食品やハーブで頻繁かつ大量に摂取される化合物。 薬理学。 解像度 2020、161、105109。[相互参照]
178. マソッサイ、K. リン、YY; チャウンチャイヤクル、R. コネチカット州スー； リー、SD; アラバマ州ヤン、プロトカテキュ酸の 12 週間投与は、老化自然高血圧ラットにおけるインスリン誘導性およびインスリン様成長因子-1-誘導性の血管弛緩および抗酸化活性を改善します。 Nutrients 2019、11、699. [CrossRef] [PubMed]
179. カスタニェダ＝オバンド、A. パチェコ・エルナンデス、メリーランド州; パエス・エルナンデス、メイン州。 ロドリゲス、JA; カリフォルニア州ガラン・ビダル アントシアニンの化学研究: レビュー。 食品化学。 2009、113、859–871。 [相互参照]
180. ロシャ、BS; ガゴ、B. RM州バルボサ。 Laranjinha, J. 食物ポリフェノールは、胃内で亜硝酸塩から一酸化窒素を生成し、平滑筋の弛緩を誘発します。 毒物学 2009、265、41–48。 [相互参照]
181. サントス・パーカー、JR; トラウザー州ストララー。 コロラド州バセット。 ニュージーランド、ビスパム。 チョンチョル、MB、 アザラシ、DR クルクミンの補給は、一酸化窒素の生物学的利用能を高め、酸化ストレスを軽減することにより、健康な中年以上の成人の血管内皮機能を改善します。 エイジング 2017、9、187–208。 [相互参照]
182. イジデ、C. スカフロ、M. ネッビオソ、A. Altucci, L. 天然植物化学物質による SIRT1 活性化: 概要。 正面。 薬理学。 2020、11、1225。[CrossRef]
183. リー、D. 崔、Y. ワン、X。 リュー、F. Li, X. リンゴポリフェノール抽出物は、SIRT1/AMPK シグナル伝達を介したオートファジーの活性化を介して、遊離脂肪酸にさらされた HepG2 細胞における脂質の蓄積を軽減します。 フィトテル。 解像度 2020. [CrossRef] [PubMed]
184. シザール、A. ラビンスキー、N. ピント、JT; バラブ、P. 張、H. ロソンツィ、G. ピアソン、K。 カボ、ロード; パッチャー、P. チャン、C. 他。 レスベラトロールは、内皮細胞におけるミトコンドリア生合成を誘導します。 午前。 Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ． ハートサークル 生理。 2009、297、H13 ～ H20。 [相互参照] [PubMed]
185.男、AWC。 リー、H。 Xia, N. 内皮機能、動脈リモデリングおよび血管老化の調節におけるサーチュイン 1 の役割。 正面。 生理。 2019、10. [CrossRef] [PubMed]
186. ラグージュ、M. アルグマン、C. ゲルハート・ハインズ、Z. メジアーヌ、H. レリン、Ｃ． ドーサン、F. メサデク、N. ミルン、J. ランバート、P. エリオット、P. 他。 レスベラトロールは、SIRT1 と PGC{3}} α を活性化することでミトコンドリア機能を改善し、代謝性疾患から保護します。 セル 2006、127、1109–1122。 [相互参照] [PubMed]
187. ザン、M. 徐、Ｓ． メイトランド・トゥーラン、カンザス州。 ズッコロ、A. ホウ、X。 ジャン、Ｂ． ヴィエルズビッキ、M. フェルビューレン、テネシー州。 Cohen、RA ポリフェノールは、糖尿病性 LDL 受容体欠損マウスにおいて AMP 活性化プロテインキナーゼを刺激し、脂質を低下させ、加速したアテローム性動脈硬化を阻害します。 糖尿病 2006、55、2180–2191。 [相互参照] [PubMed]
188. 杉山正人; 川原美樹、R. 川名博司; 白砂、Ｋ． 桑山哲也; IWATA, H. 老齢牛の初期胞状卵胞由来の卵母細胞におけるレスベラトロール誘導性ミトコンドリア合成とオートファジー。 Ｊ．Ｒｅｐｒｏｄ． 開発者 2015、61、251–259。 [相互参照]
189. ヴィジオリ、F. ロドリゲス・ペレス、M. ゴメス・トーレス、オー。 ピンタド・ロサ、C. Burgos-Ramos, E. ヒドロキシチロソールは、アルツハイマー病の細胞モデルのミトコンドリアのエネルギーを改善します。 ニュートル。 神経科学。 2020 年 1 月 1 日から 11 日まで。 [相互参照] [PubMed]
190. ウー、S. Tian、L. 古代の果物と現代の機能性食品ザクロ (Punica granatum) の多様な植物化学物質と生物活性。 Molecules 2017、22、1606。[CrossRef] [PubMed]
191. トレセラ＝リンバウ、A. メディナ・レモン、A. ペレス・ヒメネス、J. マサチューセッツ州マルティネス・ゴンザレス。 ミシガン州コバス。 コレラ、D. サラス＝サルバド、J. ゴメス・グラシア、E. ラペトラ、J. アロス、F. 他。 心血管リスクの高いスペイン人におけるポリフェノールの食事摂取量と主な食品源: PREDIMED 研究。 ニュートル。 メタブ。 心臓血管。 ディス。 2013、23、953–959。 [相互参照]
192. シェーファー、S. アッセバーグ、H. クンツ、Ｓ． ミュラー、私たち。 エッケルト医師 脳の老化とアルツハイマー病に対するポリフェノールの影響: ミトコンドリアに焦点を当てる。 モル。 ニューロビオール。 2012、46、161–178。 [相互参照] [PubMed]
193. レイン、MJ; ルヌーフ、M. クルーズ・ヘルナンデス、C. アクティス・ゴレッタ、L. サウスカロライナ州タッカー。 da Silva Pinto、M. 生物活性食品化合物の生物学的利用能: 生物有効性への挑戦的な旅。 Br. Ｊ．クリン． 薬理学。 2013、75、588–602。 [相互参照] [PubMed]
194. 張、L. ヴァーガス、C. Si、H. 植物化学物質を組み合わせた相乗的な抗炎症効果とメカニズム。 Ｊ．Ｎｕｔｒ． 生化学。 2019、69、19–30。 [相互参照] [PubMed]
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